[표지]
제출문
요약문
SUMMARY
Contents
목차
제1장 서론 26
제1절 기술개발의 중요성 26
1. 기술적 측면 26
2. 경제·산업적 측면 28
3. 정책적 측면 30
제2절 연구개발 목표 및 내용 32
1. 연구개발 목표 32
2. 연구개발 내용 및 특징 32
제2장 바이오연료 생산용 고활성 조류 및 광생물반응기 개발 37
제1절 연구 범위 및 국내·외 기술개발 현황 37
1. 연구범위 37
2. 국내외 기술개발 현황 38
제2절 미세조류 탐색 및 대사공학 기술 개발 42
1. 미세조류의 균체성장 특성 조사 42
2. 자연계로부터 바이오연료 생산용 신규 미세조류 탐색 50
3. 종속영양대사를 이용한 미세조류 배양과 지질 생산 65
4. 진핵 미세조류 형질전환 및 대사 재설계 기술 개발 80
5. 남조류 Synechocystis sp. PCC6803 개량기술 개발 94
6. Chlorella sp. 227 특성 연구 104
제3절 기포탑 광생물반응기 이용 조류 배양 및 지질 생산 112
1. Chlorella sp. KR-1 112
2. Coccomyxa sp. C-169 144
3. 신규 미세조류 157
4. 석탄발전 배가스 이용 미세조류 배양 및 지질 생산 159
제4절 미세조류 수확기술 개발 173
1. 화학응집 173
제5절 결론 및 향후 계획 179
제3장 촉매전환에 의한 고품질 경유 생산 기술 개발 181
제1절 연구의 필요성 및 기존연구동향 181
1. 바이오 연료의 필요성 및 원료선정 181
2. 지질의 경유 전환 공정 및 촉매 분야 최근 연구 동향 184
3. 본 연구의 범위 189
제2절 실험방법 190
1. 시약 및 촉매 190
2. 탈산소 반응기 및 반응조건 191
3. 생성물 분석 조건 193
4. 촉매 특성 분석 194
제3절 실험결과 및 토의 195
1. 귀금속 촉매를 이용한 oleic acid의 batch-mode 탈산소반응 195
2. 귀금속/무기물 촉매의 바이오디젤/식용유 batch 탈산소반응 199
3. 무기물/귀금속촉매를 이용한 콩기름의 연속식 탈산소반응 201
4. 신물질 촉매 합성 및 oleic acid 탈산소 반응 210
제4절 결론 228
제4장 다당류 촉매 전환에 의한 고품질 바이오가솔린 생산 및 열화학 복합 전환 공정 개발 229
제1절 실험 장치 및 방법 231
1. 미세조류 열분해에 의한 지질 추출 231
2. 당류 바이오매스의 촉매 전환에 의한 화학원료 생산 234
3. 가스 엔진 238
제2절 실험결과 및 고찰 241
1. 미세조류 열분해에 의한 지질 추출 241
2. 당류 바이오매스의 촉매 전환에 의한 화학원료 생산 253
3. 가스 엔진을 통한 전력 생산 265
제3절 결론 및 향후계획 268
제5장 조류 부산물을 이용한 바이오복합소재 개발 270
제1절 1차년도 연구결과 요약 271
제2절 조류 섬유 보강 바이오복합재료 제조 및 특성분석 272
1. 폴리프로필렌/폴리락틱산 브랜드 특성분석 272
2. 조류 섬유 특성분석 280
3. 조류 보강 폴리프로필렌/폴리락틱산 바이오복합재료 제조 282
4. 조류 보강 폴리프로필렌/폴리락틱산 바이오복합재료의 특성분석 283
제3절 결론 및 향후계획 293
제6장 결론 294
참고문헌 298
서지정보양식(BIBLIOGRAPHIC INFORMATION SHEET) 311
〈표 1-1〉 조류 이용 바이오연료 생산 세부기술 33
〈표 2-1〉 국내 조류 바이오에너지 R&D 현황 41
〈표 2-2〉 실험에 사용된 KCTC 균주 목록 43
〈표 2-3〉 N8 배지 조성표 44
〈표 2-4〉 분리배양된 미세조류 GenBamk 등록 및 기존 균주와의 유사성 55
〈표 2-5〉 분리배양된 미세조류 바이오매스 생산량 58
〈표 2-6〉 분리 배양된 미세조류 지방산 분포 60
〈표 2-7〉 SEM 전처리 조건 66
〈표 2-8〉 시뮬레이션 실험 디자인 90
〈표 2-9〉 구축된 모델 검증을 위한 실험 배양 결과와 시뮬레이션 결과 비교 90
〈표 2-10〉 구축된 모델 검증을 위한 knockout 시뮬레이션 결과 90
〈표 2-11〉 Gene deletion analysis 시뮬레이션 결과 91
〈표 2-12〉 형질전환에 사용된 프라이머 염기서열, 클로닝된 DNA 절편 크기 및 항생제 종류 98
〈표 2-13〉 Example of cultivation medium for microalgae 106
〈표 2-14〉 Contents of basic SE(Soil Extract) medium 107
〈표 2-15〉 EF-TEM 전처리 방법 115
〈표 2-16〉 빛 세기 및 질산염 농도에 따른 지방산 함량 및 조성 변화 119
〈표 2-17〉 온도 및 질산염 농도에 따른 세포 내 지방산 조성 변화 125
〈표 2-18〉 초기 pH에 따른 KR-1 의 지방산 조성 변화 128
〈표 2-19〉 기포탑 광생물반응기에서 질산염 농도에 따른 지방산 조성 변화 131
〈표 2-20〉 인산염 농도에 따른 KR-1 의 지방산 조성 변화 134
〈표 2-21〉 빛 세기와 온도 복합효과에 의한 KR-1 의 지방산 조성 변화 137
〈표 2-22〉 질산염 농도에 따른 KR-1 균체내 각 지방산 함량(A) 및 조성(B) 변화 142
〈표 2-23〉 부분 요인 배치법에 사용된 인자들의 수준에 따른 배양 환경 조성 145
〈표 2-24〉 부분 요인 배치법의 실험계획 146
〈표 2-25〉 배양 환경 변화에 따른 성장 속도에 대한 인자들의 영향과 신뢰도 147
〈표 2-26〉 요인 인자 배치법에 사용된 인자들의 수준에 따른 배지 조성 148
〈표 2-27〉 부분 요인 배치법의 실험 계획 149
〈표 2-28〉 배지 조성 변화에 따른 성장속도에 대한 인자들의 영향과 신뢰도 150
〈표 2-29〉 질산염과 인산염이 지질 축적량에 미치는 영향을 파악하기 위한 실험의 배양 조건 151
〈표 2-30〉 질산염과 인산염이 지질 축적량에 미치는 영향을 파악하기 위한 실험의 배지 조성 151
〈표 2-31〉 영양성분 조건별 총 지질축적량, 지질축적속도, 세포건조중량과 세포당 지질축적량 154
〈표 3-1〉 본 과제의 2차년도 목표 190
〈표 3-2〉 본 반응에 사용된 귀금속촉매들의 N₂ 및 CO 흡착 결과 195
〈표 3-3〉 350℃에서 3h 반응 후 GC-MS를 통해서 확인한 촉매별 생성물 분포 198
〈표 3-4〉 400℃에서 3h 반응 후 GC-MS를 통해서 확인한 촉매별 생성물 분포 201
〈표 3-5〉 탈산소반응 전후 5 wt% Pt/C 촉매의 N₂ 및 CO 흡착 결과 204
〈표 3-6〉 Crystallite size of 20 wt.% Ni/MG70 catalysts calcined at various temperatures 212
〈표 3-7〉 Characteristics of the prepared catalysts 215
〈표 3-8〉 Characteristics of 20 wt% Ni/MG70 catalysts calcined at various temperatures 216
〈표 3-9〉 Reduction degree of 20 wt.% Ni/MG70 catalysts calcined at various temperatures 219
〈표 3-10〉 Reaction results of deoxygenation of oleic acid over 20 wt.% Ni/MG70... 225
〈표 4-1〉 HPLC를 이용한 HMF 분석 조건 237
〈표 4-2〉 HPLC를 이용한 당 분석 조건 237
〈표 4-3〉 Small-capacity biomass gasification cogeneration systems 238
〈표 4-4〉 가스엔진 사양 239
〈표 4-5〉 식(4-1)을 이용한 클로렐라 내 지질 함량 계산 244
〈표 4-6〉 2단 열분해 단계별 수율 250
〈표 4-7〉 1차 열분해 생성물 GC/MS 분석 결과 251
〈표 4-8〉 2차 열분해 생성물 GC/MS 분석 결과 252
〈표 5-1〉 폴리프로필렌 및 폴리락틱산의 특성 273
[그림 1-1] 조류를 이용한 바이오연료 생산기술 개요 32
[그림 2-1] 고활성 조류 및 광생물반응기 기술개발 개요 37
[그림 2-2] 전 세계 미세조류 R&D 현황 40
[그림 2-3] 플라스크 배양에서 KCTC 균주의 균체농도(A) 및 pH(B) 변화 ① 45
[그림 2-4] 플라스크 배양에서 KCTC 균주의 균체성장률 비교 49
[그림 2-5] 조류 분리 과정 51
[그림 2-6] 국내 하수, 논, 폐수처리장등에서... 51
[그림 2-7] 고농도 이산화탄소를 적용한 미세조류 배양장치 53
[그림 2-8] 광학 현미경(X400)으로 관찰된 분리 배양된 순수 미세조류 54
[그림 2-9] 분리 배양된 미세조류 10종에 대한 성장곡선 57
[그림 2-10] 분리 배양된 미세조류(a) 바이오매스, 지질 생산량, (b) 지질함량 59
[그림 2-11] 15% 이산화탄소를 적용한 시간에 따른 미세조류 성장 62
[그림 2-12] 15% 이산화탄소를 적용한 미세조류 성장곡선 (a) OD, (b) Biomass 63
[그림 2-13] Chlorella sp. KR-1 균주의 광학현미경(A) 및 SEM(B) 사진 65
[그림 2-14] KR-1 균주의 플라스크 배양사진 66
[그림 2-15] 지방산 분석 절차 67
[그림 2-16] KR-1 의 전형적인 지방산 크로마토그램 68
[그림 2-17] 빛이 있는 조건에서 포도당 첨가 농도에 따른 KR-1의... 70
[그림 2-18] 빛이 없는 조건에서 포도당 첨가 농도에 따른 KR-1의 균체성... 71
[그림 2-19] 포도당 첨가 농도에 따른 KR-1 의 지방산 함량 및 최종 균체... 72
[그림 2-20] 실험에서 사용된 폐 글리세롤 사진 74
[그림 2-21] 글리세롤 첨가에 따른 KR-1 균체성장 변화 75
[그림 2-22] 배양 7일 후 글리세롤 첨가 플라스크 배양 사진 76
[그림 2-23] 시약급 글리세롤 (A)과 폐 글리세롤 (B)의 첨가량에 따른... 77
[그림 2-24] 염화나트륨 농도에 따른 KR-1의 균체성장 (A),... 79
[그림 2-25] Coccomyxa sp. C-169의 selection marker 선별. 각각의 항생제를 50μ... 82
[그림 2-26] Coccomyxa sp. C-169의 2차년도 중심대 사작용 모델 86
[그림 2-27] 2차년도 Coccornyxa sp.모델에 적용된 reaction들의 분포 87
[그림 2-28] 모델에 적용된 reaction들의 각 세포 소기관별 대사 분포 87
[그림 2-29] 대사체 흐름에 관여하는 transport system 분포 88
[그림 2-30] Gene deletion analysis 시뮬레이션 결과 92
[그림 2-31] glgAl의 5' 말단(up)과 3' 말단... 97
[그림 2-32] [그림 2-31]의 방법으로 재조합된... 97
[그림 2-33] glgAl 형질전환체의 제작과정과 고체배지에서 생장중인 이미지 그리고 PCR... 99
[그림 2-34] DesA(slr1350), desA(slr1350)/glgB(sll0158), desA(slr1350)/glgA(sll1393)... 100
[그림 2-35] glgB(sll0158), desA(slr1350)/glgB(sll0158) 형질전환... 101
[그림 2-36] desD(sll0262), desD(sll0262)/glgA(sll1393) 형... 102
[그림 2-37] desD(sll0262)/desA(slr1350) 형질전환체 이미지 및... 103
[그림 2-38] Time course of Chlorella sp. 227 growth on different... 108
[그림 2-39] Time course of Chlorella sp. 227 FAMEs and Nitrogen... 109
[그림 2-40] Time course of Chlorella sp. 227 FAMEs and D.C.W on organic carbon... 110
[그림 2-41] Time course of Chlorella sp. 227 FAMEs and D.C.W on... 111
[그림 2-42] 1 L 규모 기포탑 광생물반응기 배양사진 114
[그림 2-43] 7 L 규모 기포탑 광생물반응기 배양사진 114
[그림 2-44] 빛 세기 및 질산염 농도에 따른 KR-1의 균체성장... 117
[그림 2-45] 빛 세기 및 질산염 농도에 따른 KR-1 내 전체 지방산 함량... 118
[그림 2-46] 빛 세기 89 µ㏖/m²s에서 배양시간에 따른 KR-1 의 농도변화 사진... 120
[그림 2-47] 질산염 농도 I mM에서 온도에 따른 KR-1 의 균체성장... 121
[그림 2-48] 질산염 농도 5 mM에서 온도에 따른 KR-1 의 균체성장 (A) 및 pH (B) 변화 122
[그림 2-49] 질산염 농도 1 mM 및 5 mM에서 온도에 따른 KR-1의 전체 지방... 124
[그림 2-50] 초기 pH에 따른 KR-1의 균체성장 (A) 및 pH (B) 변화 127
[그림 2-51] 초기 pH에 따른 KR-1의 전체 지방산 함량 및 생산량 변화 128
[그림 2-52] 질산염 농도에 따른 KR-1의 균체성장 (A) 및 pH (B) 변화 130
[그림 2-53] 질산염 농도에 따른 KR-1의 전체 지방산 함량 및 생산량 변화 131
[그림 2-54] 인산염 농도에 따른 KR-1의 균체성장 (A) 및 pH (B) 변화 133
[그림 2-55] 인산염 농도에 따른 KR-1의 전체 지방산 함량 및 생산량 변화 134
[그림 2-56] 질산염 농도 5 mM 조건에서 빛 세기 및 온도의 복합 효... 136
[그림 2-57] 해수 첨가에 따른 KR-1의 균체성장 (A) 및 pH (B) 변화 138
[그림 2-58] 7 L 기포탑 광생물반응기에서 질산염 농도에 따른 KR-1의 균체... 140
[그림 2-59] 7 L 규모 기포탑 광생물반응기에서 질산염 농도에 따른 KR-1의 균... 141
[그림 2-60] 7 L 기포탑 광생물반응기에서 KR-1의 TEM 사진... 142
[그림 2-61] 배양 환경 조건에서 Coccomyxa sp. C-169의 성장속도 변화 146
[그림 2-62] 부분 요인 배치법에 의한 세 가지 환경 인자의 중요도 결정 147
[그림 2-63] 배양환경 요인배치법 실험 중인 0.5 L 광생물반응기 배양 모습 148
[그림 2-64] 배지 조성에 따른 Coccomyxa sp. C-169의 성장속도 변화 149
[그림 2-65] 부분 요인 배치법에 의한 4개의 배지 내 구성 성분의 중요도 결정 150
[그림 2-66] 질산염과 인산염이 고갈된 배지에서의 영양분 변화량 153
[그림 2-67] 질산염과 인산염이 고갈된 배지에서의 chlorophyll과 세포량 변화 153
[그림 2-68] 질산염과 인산염이 고갈된 배지에서의 세포수와 세포크기 154
[그림 2-69] 대조구와 실험구의 상대적인 지방축적량 비교 155
[그림 2-70] 기포탑 광생물반응기 환경에서 신규 미세조류의 균체성장 (A) 및 지방산 생산성 (B) 비교 158
[그림 2-71] 옥외 유리온실 설계자료 159
[그림 2-72] 옥외 유리온실 사진 160
[그림 2-73] 석탄발전 배가스 압축·저장·이용 시설 161
[그림 2-74] 기포탑 광생물반응기에서 KCTC 균주의 균체성장 (A) 및 pH (B) 변화 ① 164
[그림 2-75] 기포탑 광생물반응기에서의 KCTC 균주의 균체성장률 비교 167
[그림 2-76] 플라스크 배양 대비 기포탑 광생물반응기의 균체성장률 증가 비교 167
[그림 2-77] KCTC 균주별 균체 내 지방산 함량 (A) 및 조성 (B) 168
[그림 2-78] 기포탑 광생물반응기에서 석탄발전 배가스 이용 KCTC 균주의 균... 170
[그림 2-79] 석탄발전 배가스 배양시 균체성장률 172
[그림 2-80] 기포탑 광생물반응기 이용 화학응집 실험 사진 173
[그림 2-81] 화학 응집제 종류에 따른 KR-1의 응집효율 175
[그림 2-82] 화학 응집제 투여 30분 후 응집 사진 175
[그림 2-83] Al₂(SO₄)₃ 농도별 첨가한 후 침전 시간에 따른 응집 효율 176
[그림 2-84] Al₂(SO₄)₃ 첨가에 따른 KR-1 응집 관찰 177
[그림 2-85] 기포탑 광생물반응기에서 Al₂(SO₄)₃ 응집침전에 대한 가스 공급속도의 영향 178
[그림 2-86] 기포탑 광생물반응기에서 Al₂(SO₄)₃ 응집침전에 대한 첨가량의 영향 178
[그림 3-1] 바이오 연료의 정의를 표시한 모식도 181
[그림 3-2] 바이오 매스 성분별 바이오 연료 전환 공정 182
[그림 3-3] 여러 가지 물질들의 에너지 밀도 비교 183
[그림 3-4] 지질과 메탄올의 전이에스테르화 반응에 의한 바이오디젤 생성반응 184
[그림 3-5] 전이에스테르화 반응에 의한 FAME구조의 기존 바이오디젤과 탈산소 반응... 185
[그림 3-6] Centia Process 개념도 188
[그림 3-7] 전체 연구과제에 대한 본 연구의 역할 189
[그림 3-8] 탈산소 반응에 사용된 autoclave 사진 191
[그림 3-9] 탈산소반응용 고정층 반응기의 schematic diagram 192
[그림 3-10] 반응 생성물의 분석 방법 193
[그림 3-11] N₂ 흡착에 의한 촉매들의 기공분포 196
[그림 3-12] 반응은도 및 촉매의 종류에 따른 탈산소반응 생성물의 산소함량 196
[그림 3-13] 반응시간에 따른 400℃ batch mode반응에서의 생성물 분포변화 197
[그림 3-14] 백금 및 팔라듐 촉매 및 반응온도에 따른 FAME의 batch mode 탈산소반응 생성물의 산소함량 199
[그림 3-15] 촉매에 따른 콩기름의 batch mode 탈산소반응 생성물의 산소함량 200
[그림 3-16] 반응은도 350℃에서 질량공간속도(WHSV)에 따른 5 wt% Pt/C 촉매의 산소제거율 변화 202
[그림 3-17] 반응온도 400℃에서 질량공간속도(WHSV)에 따른 5 wt% Pt/C 촉매의 산소제거율 변화 203
[그림 3-18] 5 wt% Pt/C 촉매의 탈산소반응 전/후 투과전자... 205
[그림 3-19] MgO 함량이 다른 촉매들간의 연속탈산소반응의 활성비교 206
[그림 3-20] 무기물촉매인 MG63과 귀금속촉매인 5 wt% Pt/C 간의 연속탈산소 반응의 활성비교 207
[그림 3-21] MG63을 촉매로 이용한 콩기름의 연속공정반응에서 여러 가지 재생법에 따른 산소제거율의 변화 208
[그림 3-22] Hydrotalcite 촉매 및 재생법을 이용한 탄화수소 연속생산공정의 개념도 209
[그림 3-23] XRD patterns of 15 wt.% Ni-Ce(1-x)-Zr(x)O₂[이미지참조] 211
[그림 3-24] XRD patterns of fresh 20 wt.% Ni/MG70... 212
[그림 3-25] XRD patterns of reduced 20 wt.%... 213
[그림 3-26] Adsorption isotherms of N₂ at 77K on the 15 wt.% Ni-Ce(1-x)--Zr(x)O₂[이미지참조] 214
[그림 3-27] Meso pore distribution of 15 wt.% Ni-Ce(1-x)-Zr(x)O₂[이미지참조] 214
[그림 3-28] Surface area of 15 wt.% Ni-Ce(1-x)-Zr(x)O₂[이미지참조] 215
[그림 3-29] H₂-TPR patterns of Ce(1-x)-Zr(x)O₂[이미지참조] 217
[그림 3-30] H₂-TPR patterns of 15 wt.% Ni-Ce(1-x)-Zr(x)O₂[이미지참조] 218
[그림 3-31] H₂-TPR patterns of 20 wt.% Ni/MG70... 219
[그림 3-32] TEM images of reduced 20 wt.% Ni/MG70 catalysts calcined at 300℃ 220
[그림 3-33] TEM images of reduced 20 wt.% Ni/MG70 catalysts calcined at 400℃ 221
[그림 3-34] TEM images of reduced 20 wt.% Ni/MG70 catalysts calcined at 500℃ 222
[그림 3-35] TG profiles of 20 wt.% Ni/MG70 catalysts... 223
[그림 3-36] Oleic acid conversion with various temperatures... 225
[그림 3-37] C17(heptadecane + heptadecene) selectivities...[이미지참조] 226
[그림 3-38] Oxygen contents of liquid products depending... 227
[그림 4-1] 4장 기술 범위 230
[그림 4-2] 기초 열분해 분석을 위한 열천칭 반응기 232
[그림 4-3] GC Pyrolyzer 233
[그림 4-4] 마이크로 열분해장치 234
[그림 4-5] 회분식 반응기 및 내부 구조 235
[그림 4-6] 고체상 촉매 전환 반응기 236
[그림 4-7] 가스엔진 발전특성 평가 시스템 240
[그림 4-8] 설치된 합성가스 발전 특성 평가 시스템 240
[그림 4-9] 클로렐라 바이오매스 TGA/DTG 분석 결과 242
[그림 4-10] 지질 함량에 따른 클로렐라 바이오매스 DTG 곡선 242
[그림 4-11] DTG 피크 높이와 지질 함량과의 관계식 243
[그림 4-12] Effect of water content on (a) pyrolysis conversion... 244
[그림 4-13] 400℃에서 수행한 미세조류 GC-pyrolyzer peak(7.7wt%) 247
[그림 4-14] 온도별 미세조류 GC-pyrolyzer peak(7.7wt%) 247
[그림 4-15] 미세조류 열분해 조성(7.7wt%) 248
[그림 4-16] 미세조류 열분해 조성(23.0wt%) 248
[그림 4-17] 미세조류 열분해 조성(45.0wt%) 249
[그림 4-18] 2단 열분해 공정 모식도 249
[그림 4-19] 1차 열분해 액체 생성물 및 잔류물 250
[그림 4-20] 열분해 생성물 비점분포 253
[그림 4-21] 반응 조건에 따른 과당 전환율, HMF 선택도 및 수율 비교 254
[그림 4-22] DMSO, DMF 용매 시스템에서의 과당 전환율, HMF 선택도 및 수율 비교 255
[그림 4-23] 반응 온도 100℃에서의 시간에 따른 용액의 색깔 변화 258
[그림 4-24] 반응 온도 100℃에서의 시간에 따른 과당 전환율, HMF 선택도 및 수율 259
[그림 4-25] 반응 온도 80℃에서의 시간에 따른 용액의 색깔 변화 260
[그림 4-26] 반응 온도 80℃에서의 시간에 따른 과당 전환율, HMF 선택도 및 수율 261
[그림 4-27] 반응 온도 60℃에서의 시간에 따른 용액의 색깔 변화 262
[그림 4-28] 반응 온도 60℃에서의 시간에 따른 과당 전환율, HMF 선택도 및 수율 그래프 263
[그림 4-29] Amberlyst-15 재활용 테스트 - 과당 전환율, HMF 선택도 및 수율 비교 263
[그림 4-30] HMF의 과반응 및 열적 안정성 테스트(100℃, 2시간 반응) 264
[그림 4-31] 이상 촉매 반응 시스템 및 단일 상 촉매 시스템에서의 포도당 전환율,... 264
[그림 4-32] Diagram of gas engine 266
[그림 4-33] 모사합성가스 비율에 따른 발열량 변화 266
[그림 4-34] 모사합성가스 발열량 변화에 따른 전력 생산변화 267
[그림 4-35] 모사합성가스 발열량 변화에 따른 배가스 온도변화 267
[그림 5-1] 폴리락틱산 구조 및 폴리프로필렌과의 1:1 브랜드 274
[그림 5-2] 폴리프로필렌, 폴리락틱산 및 폴리프로필렌/폴리프로필렌 브랜드의 열분해 곡선 275
[그림 5-3] 폴리프로필렌/폴리프로필렌 브랜드, 폴리프로필렌, 폴리락틱산의 결정화 특성 276
[그림 5-4] 폴리프로필렌/폴리프로필렌 브랜드, 폴리프로필렌, 폴리락틱산의 결정화 거동 279
[그림 5-5] 홍조류 281
[그림 5-6] 홍조류 섬유 281
[그림 5-7] 폴리프로필렌/폴리락틱산, 조류 섬유 보강 바이오복합재료 (a) 저장탄성률, (b) tan δ 284
[그림 5-8] 조류 섬유 보강 폴리프로필렌, 폴리락틱산 및 폴리프로필렌/폴리락틱산 고... 285
[그림 5-9] 폴리프로필렌/폴리락틱산, 조류 섬유 보강 바이오복합재료 치수안정성 및 열팽창계수 287
[그림 5-10] 조류 섬유 보강 폴리프로필렌, 폴리락틱산 및... 288
[그림 5-11] 조류 섬유 보강 폴리프로필렌, 폴리락틱산 및 폴리프로필렌/... 290
[그림 5-12] 조류 섬유 보강 폴리락틱산 고분자매트릭스 바이오복합재료의 파단면... 292