I. 제목
우리나라 주요작물 바이러스의 구조 및 기능유전체 연구
II. 연구개발의 목적 및 필요성
1. 연구 개발의 목적
국내 주요 Potyvirus와 Potexvirus 중 다양한 계통을 선발하여 각 바이러스 계통의 생물학적 특성, 혈청학적 성질 및 분자생물학적 성질 등을 중심으로 기초적인 특성을 정리한다. 바이러스는 주로 RNA를 핵산으로 가지고 있지만 RNA 그 자체를 연구하기에는 여러 가지 제약이 있기 때문에 효율적으로 감염할 수 있는 DNA 클론을 확보하는 것이 중요하다. 이를 위해 Potyvirus와 Potexvirus 속의 대표적인 계통을 선발하여 감염 가능한 DNA 클론을 제작한다. 중요 Potyvirus인 SMV 및 PepMoV 전체 게놈분석을 실시하여 바이러스의 변이 과정 및 그 기전에 대하여 연구한다. 또한 바이러스 유전자의 과발현을 통해 해당 유전자의 바이러스병의 발병 및 병원성 결정에 대한 기능 및 역할을 연구하기 위해 단백질 과발현용 벡터를 제작하고, 목표 유전자를 식물체 내에서 과발현 시켜 해당 단백질이 바이러스 증식 및 병원성 발현에 미치는 영향을 연구한다.
국내 주요 곤충증식성 식물바이러스 중 RBSDV에 감염된 벼를 확보하여 dsRNA를 추출한다. RBSDV의 dsRNA를 주형으로 RT-PCR 기법을 이용하여 RBSDV의 전체 genomic sequence를 결정한다. RBSDV의 전체 RNA를 주형으로 ORF 1, 2, 9 및 12를 클로닝하여 Sf9 세포에 co-transfection함으로써 polyhedrin promoter의 조절 하에 polyhedrin과 RBSDV ORF의 fusion protein을 발현하는 각각의 재조합 AcNPV들을 제작한다. Sf9 세포에서 증식한 베큘로바이러스 다각체를 수거하여 다각체를 정제한다. S. litura 감염 사충으로부터 바이러스의 granule을 분리하여 이러부터 SIGV의 genomic DNA를 추출한 후 그 염기서열을 결정한다. SIGV granulin의 유전자 염기서열에 대하여 기존에 보고된 다른 baculovirus들의 polyhedrin 및 granulin 유전자의 염기서열들과의 근연관계를 파악한다.
국내 주요 Tombusviridae 중 다양한 계통(분리주)을 선발하여 각 바이러스 계통의 생물학적, 세포학적, 혈청학적 특성을 검정 등을 중심으로 기초적인 특성을 정리한다. 이들 선발된 바이러스의 계통 중에서 주요한 특성을 가지고 있는 바이러스의 분리주의 염기서열을 결정한다. CarMV 및 MNSV를 대상으로 전체 게놈을 지닌 벡터 플라스미드를 제작한다. 국가 종합 보존 관리 체계를 구축하고 바이러스별 및 strain별 분석된 분리주의 특성, 병원성 등 종합적 데이터베이스를 관리한다.
국내 주요작물에 발생하는 Tobamovirus에 대해 국내 바이러스 유전자원의 수집한다. 수집된 바이러스의 기초적인 특성을 정리하고, 특히 향후 유전자원으로서의 활용 가능한 바이러스들을 분리 동정한다. 선발된 바이러스 계통의 전장의 cDNA clone의 제작하여 염기서열을 결정한다. 또한 이들 바이러스의 계통들에 대하여 현재까지 보고된 다른 바이러스들과의 Phylogenetic 분석도 병행한다. 선발한 바이러스 중 제작된 전장의 cDNA clone을 이용하여 염기서열을 결정하고 분석된 염기서열을 토대로 가장 대표적인 바이러스로 인정되는 계통을 선발한 후 Full-length cDNA 클론을 이용한 감염성 클론을 제작한다.
제미니바이러스 genome이 감염 가능한 클론으로써 숙주식물 내에서 rolling circle replication의 진행이 가능하려면 HYVV korean strain의 1 copy genome을 확보하는 것이 필요하다. 이에 따라 각각의 바이러스로부터 감염 가능한 클론을 확보하기 위해, HYVV와 SPLCV의 genomic DNA로부터 PCR 방법을 통해 클론으로 확보하고, 확보된 클론을 이용하여 서열내에 존재하는 제한효소를 이용하여 HYVV와 SPLCV의 dimer를 확보하여 plant expression vector안에 삽입 된 infectious clone을 agrobacterium GV3101에 도입한 후 대량 배양을 통해 모델 식물인 N. benthamiana에 agroinoculation 방법으로 감염시켜 모델 식물의 증상을 연구한다.
농촌진흥청 바이오그린21 사업의 연구 성과를 성공적으로 관리하기 위하여 농업생명공학연구원의 NABIC에 바이러스 게놈에 관한 홈페이지 설치 및 보완한다. 과제소개에 대한 내용을 보강하는 동시에 Infectious clone에 관한 정보 및 염기서열 등록에 관한 프로토콜을 보강하는 방향으로 추진한다. 바이러스의 전체의 게놈을 클론화하고 운반체에 삽입하여 식물에 감염성을 확인하고, 염기서열을 확인하여 바이러스 유전자의 기능을 연구하며, 게놈의 구조 등의 연구재료로 제작한다.
국내 주요작물에 발생하는 Cucumovirus의 다양한 계통을 선발하여 기초적인 병리학적 특성을 정리한다. 선발된 바이러스의 계통 중에서 주요한 특성을 가지고 있는 바이러스 분리주들의 게놈 RNA의 전 염기서열을 분석한다. 선발한 바이러스 중 전 염기서열을 분석하고, 그 결과 기 보고되지 않은 특성을 나타내며 국내에서 가장 대표적인 바이러스로 인정되는 CMV 계통을 선발하여 full-length cDNA 클론을 제작한다. 생물학적 성질 및 전염기서열을 결정한 CMV 중에서 유전자원으로 활용할 수 있다고 판단되는 바이러스 계통을 공시하여 유전자원으로서의 가능성을 검정한다.
2. 연구 개발의 필요성
바이러스는 작물체의 고사, 생육저하, 품질퇴화, 생산량 감소 등을 유발하는 주요 병원균이나 방어유전자 pool도 부족하고 바이러스 유전자 기능 및 활물기생 메카니즘에 대한 정보가 부족하여 저항성 품종개발에는 한계가 있다. 이러한 한계를 극복하기 위해 기존의 단편적인 접근체계를 탈피하고 우리나라 주요작물(15대 작물)에 침입하는 바이러스의 구조 및 기능유전체 연구를 종합적으로 수행할 필요가 있다. 따라서 기주와의 상호작용 기전, 유전자 기능, 기주범위 결정, 진화 등에 대한 메카니즘을 종합적으로 확인하고 한국산 바이러스 생물 정보를 구축하는 동시에 바이러스 유전자를 이용한 저항성 및 유용유전자 개발, 유전자 발현기구 조절, 분자농법을 위한 viral vector의 개발 등 미래의 농업생명공학 실용화의 중요한 축으로 발전가능성이 높은 연구를 지속적으로 실시할 필요가 있다. 이에 따라 본 과제를 통해 우리나라 주요 작물에 피해를 가져오는 대표적인 바이러스를 대상으로 기초 기능 연구 및 유용 유전자 발굴을 위한 연구를 수행하였다. Potyvirus, Potexvirus, 곤충매개증식성 바이러스, Tombusviridae 바이러스, Tobamovirus, Closterovirus, DNA virus, Cucumovirus, Alfamovirus, Comovirus 등의 다양한 바이러스의 유전자원 선발과 게놈분석 및 감염가능한 클론의 제작 등을 목표로 연구를 수행하였다. 또한 바이러스의 병원성 관련 유전자 탐색 및 기능 연구하고, 곤충매개증식성 바이러스의 매개곤충내 증식, 전이들에 관련되는 바이러스 유전자 탐색 및 기능을 연구하였다. 또한 RNA 자가증식 관련 유전자를 탐색하여 그 기능을 연구하였으며, 핵내DNA 증식에 관련된 바이러스 유전자를 탐색하여 기능을 연구하는 한편, 기주선택성 및 변이주도 관련 바이러스 유전자를 탐색하여 그 기능을 연구하였다. 이와 더불어 기초 연구성과 및 발굴한 유용 유전자원, 바이러스 정보 등을 체계적으로 관리하기 위해 바이러스게놈 데이터베이스를 국가종합관리체계를 바탕으로 구축하였으며 운용 중이다.
III. 연구개발의 내용 및 범위
1. Potyvirus와 Potexvirus 구조 및 기능유전체 연구
가. 주요 작물 감염 Potyvirus와 Potexvirus의 유전자원 선발
나. 게놈분석 및 감염성 클론의 제작
다. 유전자원으로서의 활용성 연구
라. PVX, Potyvirus의 병원성 관련 유전자기능 연구
2. 곤충증식 바이러스의 구조 및 기능유전체 연구
가. 국내 곤충매개 증식성 바이러스의 유전자원 선발
나. 게놈 분석 및 증식요인 유전자 선발
라. 곤충체내 증식관련 바이러스 유전자 기능연구
3. Tombusviridae 구도와 기능유전체 연구 및 주요 작물바이러스의 국가 종합 관리 체계 구축
가. 주요 Tombusviridae과 바이러스의 유전자원 선발
라. 주요바이러스 국가 종합 관리 체계 구축
4. Tobamovirus와 Closterovirus 구조 및 기능유전체 연구
가. 국내 주요 Tobamovirus와 Closterovirus의 유전자원 선발
라. 바이러스 증식 관련 유전자 탐색 및 기능구명
5. 주요 작물 감염 DNA virus의 구조 및 기능유전체 연구
가. 국내 주요 Geminivrius 유전자원 선발
나. 국내 주요 Caulimovirus 유전자원 선발
다. 게놈분석, ORF 분석 및 감염성 클론의 제작
라. 작물의 세포내 DNA virus의 증식관련 유전자의 탐색 및 기능검정
6. 바이러스 유전체정보 관리시스템 구축 및 유용유전자 기능 연구
가. 바이러스게놈 DB 구축 및 운용
다. 바이러스 유전자 anotation
라. 바이러스 발현조절 유전자 탐색 및 기능연구
7. Bromoviridae와 Comoviridae 바이러스의 구조 및 기능유전체 연구
가. 국내 주요 Cucumovirus, Alfamovirus와 Comovirus의 유전자원 선발
라. 기주선택성과 변이주도 유전자 탐색 및 기능연구
IV. 연구개발결과
국내 주요 Potyvirus와 Potexvirus 중 11종 153분리주를 확보하였으며, 이 중 PepMoV 16 계통, ZYMV 6계통, PVY 9계통, SMV 11계통, 총 42개 바이러스 계통에 대한 전체 게놈 분석을 완료함. 또한 전체 게놈 분석이 완료된 바이러스들을 대상으로 보존 및 분양용 바이러스(17계통 각 5개씩 전체 85개) 및 각 바이러스의 일부 유전자를 함유한 DNA클론의 대장균 stock (각 계통 당 11개의 서로 다른 유전자 클론 5개씩 전체 935개 대장균 stock)을 유전자원으로 등록, 기탁하였다. 식물에서 바이러스를 효율적으로 발현할 수 있는 T-DNA-based 벡터를 만들기 위하여 pCAMBIA0390 vector를 바탕으로 하여 pSNU1과 pSNU2를 제작하였다. pSNU2 벡터에 PVX full length cDNA를 클로닝하여 pSPVXp31 클론을 제작하였고 이 클론을 바탕으로 replicase의 대부분을 제거한 pSPVXp32, replicase에 histidine taq을 넣어준 pSPVXp18, 외래 유전자를 발현할 수 있는 pSPVXDP, 분자 표지용 마커로 GFP가 들어간 pSPVXDP-mGFP5, RNA 간섭현상을 유도할 수 있는 pSPVXDP-pPDS등의 클론을 제작하였다. 이렇게 만들어진 클론들이 감염능력을 확인하였다. pSNU1 벡터를 이용해 SMV G7H 분리주에 대한 full-length 클론을 제작하였으며, 분자 표지용 마커로 GFP를 발현할 수 있도록 하기 위해 SMV 클론의 P1과 HC-pro 유전자 사이에 GFP를 삽입한 클론을 제작하였다. 또한 Cucumber green mottle mosaic virus (CGMMV)에 대하여 T7 promoter를 이용하여 전체 genome을 in vitro transcription을 통해 발현이 가능하도록 감염성 클론을 제작하였다. 목표 단백질을 식물체 내에서 과발현시키기 위해 mPZP212 벡터를 바탕으로 Tobacco etch virus (TEV)의 leader sequence 및 multi cloning site (MCS)를 삽입하여 목표 유전자를 과발현시킬 수 있는 벡터를 제작하였다. 이러한 mPZP212 벡터의 발현 효율을 알아보기 위해 분자 표지 마커로 GFP를 이용하였으며 N. benthamiana에서의 GFP의 발현 효율을 agro-infiltration을 통해 확인하였다.
주요 곤충증식성 식물바이러스 중 Rice black streaked dwarf virus (RBSDV)의 전체 RNA를 주형으로, RBSDV segment 1, 3, 4, 5, 6, 7 및 8과 관련된 primer (Table 1)를 이용하여 RT-PCR 반응을 수행하여 각 segment에서 PCR products를 확보하였으며 곤충증식 바이러스 중 Spodoptera litura granulovirus (SlGV)에 감염된 S. litura 사충으로부터 SlGV의 genomic DNA를 추출하고 제한효소 분석을 수행하였으며, PCR 기법을 이용하여 granulin gene을 cloning한 후 그 염기서열을 SlGV에 감염된 S. litura 유충으로부터 SlGV의 genomic DNA를 추출하여 shot-gun library를 제작한 후, SlGV genome의 전체 염기서열을 분석하였다. 또한 곤충 매개 식물 병원성 바이러스의 유전자원을 지속적으로 탐색하고 기 탐색된 정보를 바탕으로 국내 존재하는 곤충증식 바이러스에 특이적인 primer를 제작하였다 곤충과 바이러스 간의 상호작용 연구 및 유용유전자 선발을 위해 클로닝 된 다수의 genomic clone을 확인하여 완성된 전체 염기서열을 바탕으로 하여 곤충, 식물, 곤충과 식물 모두에서 발현되는 ORF를 구분, 곤충과 바이러스 간의 상호작용을 연구하였다. 유전자원으로서의 활용성을 연구하기 위해 선발된 genome 분석 결과를 곤충 병원성 바이러스 및 여타 곤충증식 식물 병원성 바이러스와 비교하여 유전자원으로써의 유용성을 연구하였다. 또 이렇게 하여 얻은 각 ORF의 정보를 바탕으로 ORF에 대한 antibody 제작을 통하여 곤충증식 식물 병원성 바이러스의 탐색에 활용 중이다.
3. Tombusviridae 구조와 기능유전체 연구 및 작물 바이러스의 국가종합관리체계 구축
국내주요 Tombusviridae과 바이러스의 유전자원 선발하기 위해 Tombusviridae과에 속하는 바이러스를 100개 주 이상 분리하였다. 이들 선발된 바이러스를 이용하여, 온실시험을 통해 장기 보존 및 분양용 유전자원을 확보하였다 게놈분석 및 감염성 클론의 제작을 위해 Tombusviridae과에 속하는 바이러스를 감염시킨 식물로부터 전체 RNA를 정제하고, 이를 주형으로 하여 역전사를 이용하여 일차가닥을 합성한 후 특이 프라이머를 이용하여 역전사 후 폴리머라제 연쇄 반응을 이용하여 증폭시킨 후, 벡터에 클로닝하여 염기서열 분석을 통해 유전자 정보를 파악했다. 또한 주요 바이러스의 국가 종합 관리 체계 구축을 위해 국가 종합 보존관리 체계 구축하여 바이러스별 및 strain별 분석된 분리주의 특성, 병원성 등 종합적 데이터베이스 구축하였다(National Center of Plant Virus Stock and Virome DB(http://kacc.rda.go.kr/virus)).
Tobamovirus 4종 11 분리주, Closterovirus 5 분리주, Tospovirus 10 분리주의 유전자원을 선발하였으며 Tobamovirus와 Closterovirus 및 Tospovirus유전자를 분석(73개 유전자해석)하였다. 또한 벡터시스템구축을 위한 Tobamovirus의 전장의 cDNA클론을 제작하여 Tobamovirus 2종(MarMV, ZGMMV)의 감염성 전장 클론 제작, 감염성을 확인하였다. 또한 주요작물에 발생하는 Tobamovirus 및 Closterovirus의 유전자원을 다량 선발하기 위해 국내 주요작물에 발생하는 Tobamovirus 중, 주로 박과작물과 가지과 작물에 많은 피해를 주는 바이러스 유전자원의 수집하고 가지과 작물에 발생하고 있는 Tospovirus의 추가 분리 및 선발을 통하여 유전자원으로서의 활용 가능한 바이러스들을 수집하여 유전자원으로 보관하였다. 선발된 바이러스의 계통의 전장의 cDNA clone의 제작하고 선발된 바이러스를 증식기주에서 증식시킨 다음, 바이러스를 정제하고, 정제된 바이러스로부터 RNA를 추출하여, 각 바이러스의 특이적 primer를 이용한 cDNA 의 PCR반응을 통하여 염기서열을 결정하였다. 과작물에 감염하는 바이러스를 대상으로 감염성클론을 제작하고 외래유전자 삽입을 통한 박과 작물 응용 벡터제작으로의 가능성을 확인하기위해 GFP등의 reporter 유전자를 삽입하여 발현여부를 확인하였다. 또한 외래유전자의 안정성 유무을 판정하기위해 GFP유전자가 삽입된 바이러스벡터를 In Vitro transcription 반응을 통하여 합성된 전사산물을 Nicotiana benthamiana에 감염시킨 후 발현의 안정성을 체크하였다. 이 결과로부터 바이러스벡터의 이용성 및 기능유전체 활용을 위한 바이러스벡터의 활용성이 확인됨으로서 향후 병원체 및 식물의 기능유전체 연구에 활용될 것으로 기대한다.
무늬인동 (Lonicera japonica)과 고구마 (Ipomoema batatas)로부터 geminivirus에 감염된 시료 2개를 확보하여 genomic DNA의 분리하고 염기서열 분석을 수행하여 확인하였으며 본 과제를 통해 확보된 염기서열과 참고문헌 조사를 통해 universal primer를 제작, 사용하여 geminivirus의 감염여부를 탐지하였다. 전체 염기서열을 BLAST를 통해 GenBank의 기 보고된 서열과 서열정렬을 실시하였고, 이들을 종 별로 분석하여 계통 유전학적으로 분석한 결과 HYVV와 SPLCV 모두 약간의 진화적인 차이는 있지만, Begomovirus에 속하는 group임을 확인할 수 있었고, Geminiviridae의 다른 group들과는 진화적으로 거리가 있음을 확인할 수 있었다. 바이러스의 전체의 게놈을 클론화하기 위해 순화된 바이러스로부터 Full-length 클론을 제작하여 감염성을 확인하였고 이를 바탕으로 바이러스 유전자의 기능연구, 기주와의 상호작용 등의 연구하였다. Geminivirus의 유전자로서 작물형질전환과 유전자 발현 여부를 확인하기 위하여 우선 putative bidirectional promoter를 분리한 다음 complementary sense 와 virion sense쪽으로 다양한 construct를 clone 하여 이를 GUS 또는 GFP에 fusion 하므로써 promoter의 activity를 cell level과 transgenic plant를 제작하여 promoter strength를 분석하였다. 또한 AC2를 중심으로 gene supressor로 분석이 되고 있어 HYVV와 SPLCV의 AC2의 suppressor로서의 기능과 아울러서 host DNA methylation에 관한 연구를 수행하였다.
바이러스 게놈 DB 구축 및 운용을 위해 농업생명공학연구원 NABIC내 설치하였다. 농촌진흥청 바이오그린21 사업의 연구 성과(염기서열, infectious clone 등)를 성공적으로 관리하기 위하여 농업생명공학연구원의 NABIC에 바이러스게놈에 관한 홈페이지 설치 및 보완(2005년도에 과제소개에 대한 Webpage 설치)하였다. Plant virom project(Biogreen21)의 구성내용 보강하기 위해 2005년도의 간단한 과제소개에 대한 내용을 보강하는 동시에 Infectious clone (full-length cDNA)에 관한 정보 및 염기서열 등록에 관한 프로토콜을 보강하는 방향으로 추진하였다. 또한 바이러스 full-length(infectious) cDNA 제작을 수행하였다. 바이러스의 전체의 게놈을 클론화하기 위해 순화된 바이러스로부터 RT-PCR을 수행하여 cDNA를 합성하고 운반체에 삽입하여 식물에 감염성을 확인하고, 염기서열을 확인하여 바이러스 유전자의 기능연구, 게놈의 구조 등의 연구재료로 제작하여 Full-length cDNA의 감염성 확인하였다. 이를 바탕으로 Gfp 유전자가 도입된 infectious TMV cDNA를 담배에 접종하면, 바이러스가 이동하고 증식하는 현상을 실시간으로 모니터링할 수 있다. TMV-gfp를 아래 잎에 접종하였을 때, 바이러스가 줄기를 따라 올라가면서 상위엽에 강하게 발현되는 것을 확인할 수 있었다. 이는 접종부위 바로 위 잎에서 병징이 시작되는 것이 아니라 생장점 부위로 우선적으로 이동되는 것을 확인하였다. 기주식물체내에서 바이러스의 증식과 유전자 발현은 식물내재의 어떠한 유전자보다 강한 것으로 알려져 있다. 이러한 특성을 효율적으로 활용한다면 바이러스를 농업생명공학에서의 운반체로 활용이 가능하다. 즉 TMV-gfp의 기주식물체내에서의 증식과 발현결과를 볼 때, 일반적으로 장기간의 식물형질전환방법을 사용하지 않아도 유용단백질을 대량생산할 수 있을 것으로 기대된다.
Cucumovirus, Alfamovirus, Comovirus 및 Fabavirus속 바이러스에 대한 유전자원의 선발 : 국내 주요작물에 발생하는 Cucumovirus중, Cucumber mosaic virus(CMV), Peanut stunt virus(PSV) 및 Tomato aspermy virus(TAV)와 Alfamovirus의 Alfalfa mosaic virus(AlMV) 및 Comoviridae의 Fabavirus속의 Broad bean wilt virus(BBW) 등 다양한 계통(분리주)을 선발하여 기초적인 특성을 정리하였다. 특히 금후 유전자원으로서의 활용 가능한 바이러스들을 분리 동정하는데 주안점을 두었다. 연구 방법은 각 바이러스 계통의 생물학적 특성 (기주범위 조사, 전자현미경관찰), 혈청학적 성질(gel diffusion test, ELISA 분석) 및 분자생물학적 성질(게놈 RNA의 PCR 및 RFLP분석, coat protein의 분석)을 중심으로 식물바이러스의 분리 동정에 관련된 방법들을 활용하였다. 선발된 바이러스의 계통 중에서 주요한 특성을 가지고 있는 바이러스의 분리주 10-15계통을 이용하여 이들 게놈 RNA의 전 염기서열을 분석하였다. 선발된 바이러스를 증식기주에서 증식시킨 다음, 바이러스를 정제하고, 정제된 바이러스로부터 RNA를 추출하여, 각 바이러스의 특이적 primer를 이용한 cDNA의 PCR제작을 통하여 염기서열을 결정하였다. 선발한 바이러스의 전 염기서열을 분석하고, 그 결과 특징적으로 국내에서 가장 대표적인 Cucumber mosaic virus 2계통을 선발하여 full-length cDNA 클론을 제작하고, 이때 감염성 클론을 만들기 위하여 각 cDNA의 5' 말단에는 T7 promoter를 붙이며, 이를 이용하여 in vitro transcripts를 제작하여 감염성을 조사하였다. 선발된 CMV 중에서 기주 특이성이 있는 CMV-Ly2 및 CMV-Ly8계통을 이용하여, CMV의 유전자 중, 특히 기주 적응과 관련된 유전자를 분석하고 다른 계통의 CMV와 비교하여 바이러스의 진화 또는 기주적응과 관련된 유전자를 분석하였다.
V. 연구개발결과의 활용계획
○ 국내 바이러스 유전자원의 보존 및 데이터베이스의 운용에 의한 'Virome (Viral Genome) Project'에의 능동적 참여 및 국제 교류 확대
○ 국내 대학 및 민간단체 보유 농업유전자원의 효율적인 보존 및 증식
○ 국내 바이러스 유전자원의 실태 및 변이 파악과 이의 활용으로 다양화되는 작목체계에 따른 새로운 바이러스 strain의 출현 가능성에 능동적으로 대처
○ 바이러스와 기주의 상호작용 변이과정 및 병 발생 조건의 이해
○ 바이러스와 매개곤충의 상호작용과 병 매개 조건의 이해
○ 주요 작물 바이러스 방제에 활용 가능한 기반기술력 제공
○ 주요 바이러스의 저항성 회피 기전의 이해를 위한 기반정보 제공
○ 효율적인 육종 체계 확립을 위한 주요 작물 바이러스 게놈의 기능분석 및 관련 DNA 데이터베이스 구축 및 이용 기반 구축
○ 국가 종합관리체계 확립으로 자원의 이용성 증대