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표제지

목차

I. 서론 12

II. 연구사 15

1. 사슴뿔의 성장 15

가. 육경(pedicle)의 조직발생 15

나. 육경의 개시와 골막의 역할 16

다. 육경의 발달 19

라. 첫 번째 사슴뿔의 피부 조직형성 20

마. 사슴뿔(antler)의 성장 21

2. 사슴뿔의 조직이식 22

3. 암사슴의 뿔발생 유도 25

가. 암사슴의 뿔 25

나. 암사슴의 뿔발생 유도 26

4. 사슴뿔의 약리효과 28

III. 육경에 대한 외과적 자극이 사슴뿔의 성장에 미치는 영향 30

1. 서론 30

2. 재료 및 방법 31

가. 공시동물 31

나. 시험기간 및 장소 31

다. 시험설계 31

라. 사양관리 31

마. 사슴의 마취 32

바. 육경절단 32

사. 조사항목 및 방법 32

아. 통계분석 33

3. 결과 및 고찰 34

가. 뿔 발육 상황 34

나. 낙각시기 35

다. 녹용 생산량 35

라. 육경 절단 두께별 녹용생산량 36

4. 적요 38

IV. 육경 조직판 이식이 사슴뿔의 성장에 미치는 영향 39

1. 서론 39

2. 재료 및 방법 40

가. 공시동물 40

나. 시험기간 및 장소 40

다. 시험설계 40

라. 사슴의 보정 41

마. 조직판이식(flap-grafting) 41

바. 조사항목 및 방법 42

3. 결과 및 고찰 43

가. 조직판의 발달 43

나. 조직판 채취와 녹용생산량 44

다. 조직판의 발육성적 45

4. 적요 50

V. 암사슴의 뿔발생 유기에 관한 연구 51

1. 서론 51

2. 재료 및 방법 52

가. 공시동물 52

나. 시험기간 및 장소 52

다. 시험설계 52

라. 염화칼슘(CaCl₂)용액 조제 54

마. 사슴의 보정 55

바. 시험방법 55

사. 조사항목 및 방법 56

1) 암사슴의 뿔발생 유도율 56

2) 암사슴의 뿔 생산량, 길이 및 가지수 56

3) 품종별 암사슴 뿔발생 유도율 57

4) 암사슴뿔 발육상황 57

5) 사슴뿔의 성분분석 58

3. 결과 및 고찰 59

가. CaCl₂용액 처리농도가 암사슴의 뿔발생 유도에 미치는 영향 59

1) 암사슴의 뿔발생 유도 59

2) 암사슴 뿔 생산량, 뿔 길이 및 가지 수 61

나. CaCl₂용액 주사량이 암사슴의 뿔발생 유도에 미치는 영향 67

1) 암사슴의 품종별 뿔발생 유도 67

2) 암사슴의 뿔 생산량 68

3) 엘크 암사슴의 뿔 발육상황 69

4) 암사슴의 뿔발생 유도와 번식성적 75

5) 재생 뿔의 발생 76

6) 암ㆍ수 사슴뿔의 성분분석 79

다. CaCl₂용액 처리시기가 암사슴의 뿔발생 유도에 미치는 영향 83

1) 암사슴의 뿔발생 유도 83

2) 암사슴의 뿔 발육 및 뿔 생산량 84

3) 암사슴 뿔의 성분분석 85

4. 적요 87

가. CaCl₂용액 처리농도가 암사슴의 뿔발생 유도에 미치는 영향 87

나. CaCl₂용액 주사량이 암사슴의 뿔발생 유도에 미치는 영향 87

다. CaCl₂용액 처리시기가 암사슴의 뿔 발생 유도에 미치는 영향 89

VI. 암사슴 뿔의 약리 효과에 관한 연구 91

1. 서론 91

2. 재료 및 방법 92

가. 시험동물 및 시험군의 배치 92

나. 녹용추출물의 조제 92

다. 골다공증의 유발 92

라. 녹용 추출액의 투여 93

마. 채혈 및 호르몬, ALP 분석 93

바. 조직학적 및 전자현미경적 관찰 94

사. 통계처리 94

3. 결과 및 고찰 95

가. 혈중 estradiol 농도의 변화 95

나. 혈중 calcitonin 농도의 변화 96

다. 혈중 osteoclacin 농도의 변화 97

라. 혈중 ALP 농도의 변화 98

마. 조직학 및 전자현미경적 소견 99

4. 적요 101

VII. 종합결론 102

VIII. 인용문헌 107

ABSTRACT 125

Appendix 131

감사의 글 134

표목차

Table 1.Types of amputation and number of sika deer 31

Table 2. Means and standard deviation of velvet antler length and point by amputation 34

Table 3. Means and standard deviation of casting date by amputation 35

Table 4. Means and ratio of velvet antler yield by amputation 36

Table 5. Means and standard deviation of antler yield by thickness of cutting pedicle after amputation in sika deer 37

Table 6. Region of grafting and number of deer by species 40

Table 7. Pedicle development and growth after flap-grafting by species 44

Table 8. Means and standard deviation of antler yield after pedicle amputation in red deer 45

Table 9. Velvet antler length and weight of flap-grafted region by species 46

Table 10. Description of CaCl₂solutions used in female elk 53

Table 11. Concentration and volume of CaCl₂and number of female deer by species 53

Table 12. Concentration and volume of CaCl₂ and date of injection in female elk 54

Table 13. Descriprion of pedicle and antler inducted with various CaCl₂conditions in female elk 60

Table 14. Length and weight of antler by CaCl₂concentration and volume in female elk 62

Table 15. Result of antlerogenesis by species in female deer 68

Table 16. Antler length and weight treated with 30% CaCl₂in female deer by species 69

Table 17. Growth of antler injected with 30% CaCl₂in female elk 71

Table 18. Wound healing period and day of antler differentiation begin 73

Table 19. Area of antler bottom section and antler yield 73

Table 20. Effect of injection of CaCl₂solution on reproduction and antler regeneration in female elk 76

Table 21. Comparison of first and regenerated antler by injection of CaCl₂solution in female elk 77

Table 22. Composition of crude protein, ether extracts and crude ash by antler part and sex in elk 80

Table 23. Composition of mineral by antler part and sex in elk 81

Table 24. Composition of amino acid by antler part and sex in elk 82

Table 25. Antler production of female deer treated with CaCl₂in July and August 83

Table 26. Time of antler production and average length and yield of antler by treament in female elk 84

Table 27. Composition of crude protein, ether extracts and crude ash in female elk antler 85

Table 28. Mineral composition of antler in female elk deer 86

Table 29. Treatment and number of rats, kind of antler extract and its dosage 93

Table 30. Effects of female or male antler extracts on serum estradiol levels in ovariectomized rats 95

Table 31. Effects of antler water extracts on serum calcitonin levels in ovariectomized rats 96

Table 32. Effects of antler water extracts on serum osteoclacin levels in ovariectomized rats 97

Table 33. Effects of antler water extracts on serum ALP levels in ovari-ectomized rats 98

Table 34. Electron microscopical findings on femur bone administrated with famale or male antler-extract in ovariectomized rats 99

그림목차

Fig. 1. Graph of antler yield by thickness of cutting pedicle after amputation in sika deer 37

Fig. 2. (A) : Region of flap-grafting in elk, (B) : flap-graft of sika deer. 42

Fig. 3. (A) : Amputated pedicle for frap-grafting, (B) : growth of frap-grafted antler in sika deer, (C) : frap-grafted antler in forehead, (D) : frap-grafted antler which was not fixed in forehead skin. 48

Fig. 4. Antler of red deer stag flap-grafted in midline of forehead, (A): 2-year-old Red deer stag with three antlers, (B): curved anlter of (A), (C): hard antler natural cast of (A), 26cm, 122g. 49

Fig. 5. 2-year-old elk deer bull with three antlers flap-grafted (A) : Three points of right velvet anlter whose pedicle was amputated, (B) : flap-grafted velvet antler which has two points 49

Fig. 6. The correct terminology for the different parts of the antler. 57

Fig. 7. The yield of antler by CaCl₂concentration and volume in female elk. 63

Fig. 8. Antler length by volume of CaCl₂solution in female elk (A) : 15% of CaCl₂solution, (B) : 30% of CaCl₂solution, (C) : 50% of CaCl₂solution. 63

Fig. 9. Diagram of wound regions in different width and depth (A) : 15% of CaCl₂solution, (B) : 30% of CaCl₂solution, (C) : 50% of CaCl₂solution. 64

Fig. 10. Diagram of wound regions by frequency and direction of injection Note (A) : injected once, 1 point, ideal type, (B) : injected twice, 2 points, (C) : injected three times, 3 points. 64

Fig. 11. Shapes of antler inducted in female deer (A)right : in jected three times, 3 points, broken, left : in jected once, (B)right : glossy and lesshair, left : in jected twice, 65

Fig. 12. (A) : Normal forehead of female elk before antler in duction, (B) : injection to antlerogenic expected region in female elk. 66

Fig. 13. Female elk whose artificially-induced antler was sucking its fawn (100 days after treatment). 66

Fig. 14. Graph of growth pattern of antlerin jected with 30％ CaCl₂in female elk 72

Fig. 15. Relationship of areaofantler bottom section and antler yields. 75

Fig. 16. Stages of velvet antler growthin female elk (A) : before antler induction, (B) : after 50 days, (C) : after 100 days, (D) : after 130 days 78

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