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목차

[표제지 등]=0,1,2

제출문=0,3,1

요약문=1,4,1

I. 제목=1,4,1

II. 연구목적 및 중요성=1,4,2

III. 연구내용 및 결과 요약=2,5,2

IV. 수의과학검역원 단독수행시 미해결분야의 해결된 기술요약=4,7,2

V. 연구 결과 활용=6,9,3

VI. 공동연구 상대국 수행기관 현황=9,12,2

SUMMARY=11,14,3

목차=14,17,3

제1장 우역항체검출용 효소면역측정법 개발=16-1,20,2

I. 서언=17,21,2

II. 재료 및 방법=18,22,1

1. 바이러스 및 혈청=18,22,1

2. 단클론항체 생산=19,23,1

3. Baculovirus에서의 full-length N단백질 발현=19,23,2

4. 대장균에서의 truncated N mutants의 발현=20,24,3

5. 우역바이러스 Ndb전자 염기서열 분석=22,26,1

6. SDS-PAGE 및 Western blotting=22,26,2

7. Immunofluorescence assay=23,27,1

8. Biotinylated mAb를 이용한 competition binding assay=23,27,2

9. Indirect ELISA=24,28,1

10. Blocking ELISA=24,28,2

11. Competitive ELISA=25,29,1

12. 바이러스 중화시험=25,29,1

III. 결과 및 고찰=26,30,1

1. 우역바이러스 단클론항체의 생산=26,30,6

2. Baculovirus발현 N 단백질의 생산=31,35,6

3. 우역바이러스 N단백질의 염기서열 분석=37,41,4

4. Truncated N mutant를 이용한 epitope mapping=40,44,9

5. Recombinant N 단백질을 이용한 우역 항체검출용 C-ELISA개발=49,53,9

IV. 종합결과=57,61,3

V. 적요=59,63,1

VI. 참고문헌=59,63,6

제2장 구제역 진단제제 개발=64-1,69,2

I. 서언=65,70,2

II. 재료 및 방법=66,71,1

1. 바이러스 및 혈청=66,71,1

2. 단클론 항체=67,72,1

3. RT-nested PCR=67,72,6

4. 구제역 3ABC단백질 발현=72,77,2

5. NSP-ELISA=73,78,2

6. 간접형광항체법=74,79,2

III. 결과 및 고찰=75,80,1

1. 구제역바이러스 VPI 유전자 분석=75,80,4

2. 구제역진단항원 및 항체 생산=79,84,3

3. RT-nested PCR을 이용한 구제역바이러스유전자검출을 위한 PCR primers 평가=81,86,4

4. 구제역백신추출항원을 이용하여 생산한 단클론항체의 유효성평가=85,90,2

IV. 종합결과=86,91,2

V. 적요=87,92,1

VI. 참고문헌=88,93,3

제3장 우폐역 진단기법 및 진단제제 개발=90-1,96,2

I. 서언=91,97,1

II. 결과=92,98,1

1. 우폐역 단클론 항체 생산=92,98,1

1) 우폐역 면역항원 생산=92,98,1

2) 단클론성 항체선발을 위한 CBPP ELISA=92,98,1

3) 우폐역 진단용 단크론성 항체 선발=93,99,1

2. 국내개발 PCR 진단법에 의한 우폐역균 검출=93,99,2

3. 프랑스 CIRAD-EMVT개발 PCR법에 의한 우폐역균 검출=94,100,5

4. 우폐역 항체검출을 위한 혈청검사기법=98,104,11

5. 우폐역 백신 Tl 또는 Tlsr에 대한 품질관리검정=109,115,5

III. 종합 결과=114,120,1

IV. 적요=114,120,1

V. 참고문헌=114,120,2

제4장 국내개발 해외전염병 진단제제 유효성 평가=115-1,122,2

I. 서언=116,123,1

II. 해외전염병 진단제제 유효성 평가=117,124,1

II-1. 돼지수포병 진단제제 (단클론항체) 유효성 평가=117,124,1

1. 재료 및 방법=117,124,1

1) 돼지수포병 바이러스 단클론 항체=117,124,1

2) 유효성 평가에 사동된 돼지수포병바이러스=117,124,1

3) 유효성 평가에 사용된 세포주=117,124,2

4) 간접형 광항체법=118,125,4

2. 결과 및 고찰=121,128,2

II-2. 아프리카돼지콜레라 진단제제 (PCR primer 및 p12 antigen) 유효성 평가=123,130,1

1. 재료 및 방법=123,130,1

1) ASFV p12 항원 및 야외혈청=123,130,1

2) 양성 및 음성 혈청=123,130,1

3) 아프리카돼지콜레라바이러스 DNA 분리=123,130,2

4) 아프리카돼지콜레라바이러스 유전자증폭=125,132,2

5) Indirect ELISA=127,134,1

2. 결과 및 고찰=128,135,1

1) PCR법에 의한 ASFV특이 유전자 검출=128,135,1

2) 유전자재조합 ASFV p12 발현단백질 항원의 항원성 조사=129,136,3

II-3. 가성우역 진단제제 (mAb 및 synthetic peptides) 유효성 평가=132,139,1

1. 재료 및 방법=132,139,1

1) 합성펩타이드절편=132,139,1

2) 우역 및 가성우역 혈청=132,139,2

3) 가성우역 N단백질특이 단클론항체 및 평가 N단백질 항원=133,140,1

4) Peptide ELISA=133,140,2

5) Indirect ELISA=135,142,1

6) Competitive ELISA=135,142,1

2. 결과 및 고찰=135,142,1

1) 합성펩타이드의 우역 및 가성우역항체와의 반응성 평가=135,142,3

2) 국내작성 가성우역 단크ffhsgkdep에 대한 반응성 평가=138,145,4

II-4. 가성우역과 우역 병인체 감별진단을 위한 RT-PCR 진단법=142,149,1

1. 재료 및 방법=142,149,1

1) PCR primer sets=142,149,1

2) 검사용 항원조직 샘플=142,149,1

3) 감염조직으로부터 genomic RNA 추출=143,150,1

4) cDNA 합성=143,150,1

5) Polymerase chain reaction=143,150,2

2. 결과 및 고찰=144,151,2

II-5. 소해면상뇌증 진단제제(mAb 및 prion) 유효성 평가=146,153,1

1. Prionics kit를 이용한 BSE prion 신속검출방법=146,153,3

2. 국내개발 Prion 재조합단백질 및 Prionxmr이 단클론항체의 유효성 평가=148,155,1

1) 시약 및 재료=148,155,1

2) Prion 재조함 단백질 및 Prion 특이 단클론 항체의 반응성 평가=148,155,2

3) Prion 특이 단클론 항체의prionrjacnf 민감도 평가=149,156,1

III. 종합결과=150,157,1

V. 적요=151,158,1

VI. 참고문헌=151,158,3

16-1,20,1

64-1,69,1

90-1,96,1

115-1,122,1

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