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목차
표제지=0,1,1
제출문=1,2,2
요약문=3,4,12
SUMMARY=15,16,12
CONTENTS=27,28,6
목차=33,34,6
제1장 연구개발과제의 개요=39,40,1
제1절 연구개발의 목적 및 필요성=39,40,3
제2절 연구개발 내용 및 범위=41,42,3
제2장 국내외 기술개발 현황=44,45,1
제1절 국내ㆍ외 관련기술 현황=44,45,3
제2절 국내ㆍ외 관련 연구내용 및 문제점과 본 연구종료 후 기대되는 국내 기술 상황=47,48,4
제3장 고기능성 대두제품 제조를 위한 발효균주 개발=51,52,1
제1절 서론=51,52,4
제2절 재료 및 방법=55,56,1
1. 사용 재료=55,56,1
2. 배지 및 배양=56,57,1
3. 분리균에 의한 isoflavone 배당체의 분해력 측정=56,57,2
4. 분리균의 isoflavone 배당체 가수분해 효소의 활성 측정=57,58,2
5. Polymerase chain reaction (PCR)=58,59,1
6. 된장의 제조=59,60,1
7. 효소의 정제=59,60,2
8. 단백질 정량=60,61,1
9. 단백질의 전기 영동=60,61,1
10. 분자량 측정=60,61,1
제3절 균주의 분리 및 선발=61,62,1
1. 균의 분리=61,62,1
2. 균주의 선발=61,62,12
3. 선발된 균주의 동정=72,73,8
4. 선발된 균주의 보존법=79,80,3
제4절 발효조건의 검토=81,82,1
1. 선발된 균주에 의한 발효과정중 genistein 및 daidzein의 2차 분해조사=81,82,2
2. 발효에 미치는 온도의 영향=82,83,2
3. 발효에 미치는 가염 시기의 영향=84,85,3
4. 발효기간에 따른 isoflavone 배당체의 분해 정도=87,88,2
5. 발효에 미치는 최적 접종량=88,89,2
제5절 발효에 미치는 염류 및 기타 첨가제효과=89,90,1
1. 염농도가 발효에 미치는 영향=89,90,3
2. 부형제가 발효에 미치는 영향=91,92,1
3. 부형제 첨가농도의 영향=92,93,1
4. 혼합발효의 효과=93,94,2
5. 실험실 scale 배양=94,95,2
제6절 대규모의 제품을 생산하기 위한 발효 및 제품화 공정=96,97,2
제7절 Bacillus sp. K123-1 균주가 생산하는 isoflavone glucosidase의 정제=98,99,1
1. Isoflavone glucosidase 생산에 미치는 배양시간의 영향=98,99,1
2. 황산암모늄 분획침전=99,100,2
3. DEAE Sephadex A-50 ion exchange column chromatography=100,101,2
4. Sephacryl S-200 HR gel chromatography=102,103,1
5. Fast protein liquid chromatography(FPLC)=102,103,3
6. 정제 효소의 순도검정=105,106,1
7. 정제 효소의 분자량 측정=106,107,1
제8절 정제된 isoflavone glucosidase의 효소학적 성질=107,108,1
1. 효소활성 최적 pH=107,108,1
2. 효소의 pH 안정성=108,109,1
3. 효소활성 최적온도=109,110,1
4. 효소의 열 안정성=110,111,1
5. 효소의 기질 특이성=111,112,4
제9절 효소를 이용한 isoflavone rich fraction 추출=115,116,1
1. 대두,대두박 및 대두분 내의 isoflavone 함량 조사=115,116,1
2. Isoflavone rich fraction 추출 공정 검토=115,116,2
제10절 Isoflavone rich fraction의 기능성 식품화 및 재료화=117,118,1
1. Isoflavone rich fraction을 첨가한 비스킷 제조=117,118,7
2. Isoflavone rich fraction을 첨가한 식초 제조=123,124,2
제4장 발효 대두제품으로부터 약리활성 물질의 분리 및 동정=125,126,1
제1절 서론=125,126,2
제2절 Isoflavone 간편 분석법 확립=126,127,1
1. 새로운 분석법 확립의 필요성=126,127,1
2. 대두 중 isoflavone 함량 분석법의 확립=126,127,2
3. 검량선의 작성=127,128,2
4. Isoflavone 함량 분석을 위한 최적 추출조건 확립=128,129,3
제3절 항치매 활성 측정법의 확립 및 활성물질의 추출ㆍ정제=131,132,1
1. Prolyl endopeptidase 저해활성 측정법의 확립=131,132,2
2. 발효 대두의 PEP 저해 활성=132,133,2
3. Prolyl endopeptidase 저해 활성물질 추출 및 정제=133,134,3
4. 활성화합물의 구조동정=135,136,11
제4절 혈전 생성 억제활성 측정법 확립=145,146,1
1. 혈전 억제활성 assay법 확립의 필요성=145,146,2
2. Thrombin time assay (TT)법의 확립=146,147,1
3. Partial thromboplastin time assay (aPTT)법의 확립=146,147,2
4. 발효 대두에서 혈전형성 억제활성 검정=147,148,3
5. 항혈전 억제활성 측정시 시료의 전처리법 확립=149,150,2
제5절 혈전생성 억제 활성 성분의 분획=150,151,1
1. 항혈전 성분의 분획 및 이화학적 성상 검토=150,151,3
제6절 혈전 용해 활성의 측정=152,153,2
제7절 항산화 활성의 측정=153,154,2
제8절 발효 산물의 약리 작용의 증감 및 유무의 판별,비교=155,156,1
1. 항치매 활성의 증감 유무의 판별=155,156,1
2. 발효에 의한 혈전형성 억제 활성의 증감유무의 판별=155,156,2
3. 발효에 의한 혈전용해 활성 및 항산화 활성 증감유무의 판별=156,157,1
제9절 유기용매 의한 간단하고 수율이 우수한 isoflavone 대량 추출법 검토=157,158,4
제10절 동정된 활성 화합물의 활성 기작 검토=161,162,1
1. 활성 성분의 IC50 value=161,162,1
2. 활성성분의 효소저해 양상=161,162,2
제11절 시작품의 isoflavone 및 유효성분 분석법 확립에 의한 품질관리법 개발=162,163,1
1. 발효대두의 품질관리법 개발=162,163,2
2. Isoflavone 합유 식초의 품질 관리법 개발=163,164,1
제12절 보존기간별 함량변화에 따른 유효기간 기준 마련=164,165,1
1. 발효 대두의 보존 기간에 따른 isoflavone 함량변화=164,165,1
2. 식초의 보존기간에 따른 isoflavone 함량변화 검토=165,166,1
제5장 목표달성도 및 관련분야에의 기여도=166,167,1
제1절 총괄추진계획표=166,167,1
제2절 연구개발 목표의 달성도=167,168,1
1. 제1세부과제=167,168,3
2. 제2세부과제=169,170,3
제6장 연구개발결과의 활용계획=172,173,1
제1절 활용분야 및 활용 방안=172,173,1
1. 활용분야=172,173,1
2. 활용방안=172,173,1
제2절 현장 보급방안,산업화 계획 방안 및 기술이전 방안=172,173,2
제3절 추가 기술개발 방안=173,174,1
제4절 연구개발 결과의 활용=173,174,1
제7장 연구개발과정에서 수집한 해외과학기술정보=174,175,2
제8장 참고문헌=176,177,8
영문목차
[title page etc.]=0,1,27
CONTENTS=27,28,12
Chapter 1. Summary of project=39,40,1
1-1. Objective and necessity=39,40,3
1-2. Contents and scopes=41,42,3
Chapter 2. Status of technical development inside and outside of nation=44,45,1
1-1. Status of the related techniques=44,45,3
1-2. The related research and problems and status of technical level expected in nation after this project=47,48,4
Chapter 3. Development of fermentation bacteria for the production of biofunctional soybean product=51,52,1
3-1. Introduction=51,52,4
3-2. Materials and methods=55,56,1
1. Materials=55,56,1
2. Medium and culture condition=56,57,1
3. Determination of hydrolizing activity for isoflavone glucosides by the isolates=56,57,2
4. Assay of isoflavone glucosidase by the isolates=57,58,2
5. Polymerase chain reaction (PCR)=58,59,1
6. Preparation of soybean paste=59,60,1
7. Purification of enzyme=59,60,2
8. Determination of protein=60,61,1
9. Electrophoresis of protein=60,61,1
10. Determination of molecular mass=60,61,1
3-3. Isolation and selection of bacteria=61,62,1
1. Isolation of bactena=61,62,1
2. Selection of bacteria=61,62,12
3. Identification of the isolates=72,73,8
4. Preservation of the selected strains=79,80,3
3-4. Determination of fermentation condition=81,82,1
1. Second degradation of genistein and daidzein durinf fermentation by the isolates=81,82,2
2. Effect of temperature on the fermentation=82,83,2
3. Effect of salt adding time on the fermentation=84,85,3
4. Time course of hydrolysis of isoflavone glucosides during fermentation=87,88,2
5. Optimal inoculum for the fermentation=88,89,2
3-5. Effect of salts and additives on the fermentation=89,90,1
1. Salt concentration=89,90,3
2. Additives=91,92,1
3. Concentration of additives=92,93,1
4. Mixed fermentation=93,94,2
5. Experimental scale fermentation=94,95,2
3-6. Fermentation process for the fermented soybean product at large scale=96,97,2
3-7. Purification of isoflavone glycosidase in Bacillus sp. K123-1=98,99,1
1. Culture time for the production of isoflavone glucosidase=98,99,1
2. Ammonium sulfate precipitation=99,100,2
3. DEAE Sephadex A-50 ion exchange column chromatography=100,101,2
4. Sephacryl S-200 HR gel chromatography=102,103,1
5. Fast Protein liquid chromatography(FPLC)=102,103,3
6. Purity of the purified isoflavone glucosidase=105,106,1
7. Determination of molecular mass=106,107,1
3-8. Properties of the purified isoflavone glucosidase=107,108,1
1. Optimal pH=107,108,1
2. pH stability=108,109,1
3. Optimal temperature=109,110,1
4. Thermal stability=110,111,1
5. Substrate specificity=111,112,4
3-9. Extraction of isoflavone rich fraction by treatment with enzyme=115,116,1
1. Content of isoflavones in soybean,soybean chip and soybean flour=115,116,1
2. Extraction process of isoflavone rich fraction=115,116,2
3-10. Isoflavone rich fraction for the biofunctional food materials=117,118,1
1. preparation of biscuit enriched isoflavone rich fraction=117,118,7
2. preparation of vinegar enriched isoflavone rich fraction=123,124,2
Chapter 4. Isolation and identification of biologically active compounds from fermented soybean products=125,126,1
4-1. Introduction=125,126,2
4-2. Establishment of a convenience isoflavone analysis method=126,127,1
1. Necessity of establishment of new analysis method=126,127,1
2. Establishment of isoflavone analysis method in soybean=126,127,2
3. Standard curves of isoflavones=127,128,2
4. Establishment of optimal pre-treatment protocols for the analysis of isoflavone contents=128,129,3
4-3. Isolation and identification of anti-dementia compounds from fermented soybeans=131,132,1
1. Setting up of prolyl endopeptidase assay system=131,132,2
2. Inhibitory activity of fermented soybeans against PEP=132,133,2
3. Extraction and purification of PEP inhibitors=133,134,3
4. Identification of PEP inhibitors=135,136,11
4-4. Setting up of anti-coagulating assay system of fermented soybean=145,146,1
1. Necessity of establishment of anti-coagulating assay system=145,146,2
2. Setting up thrombine time assay system=146,147,1
3. Setting up partial thromboplastin time assay system=146,147,2
4. Inhibitory activity of fermented soybeans against coagulation=147,148,3
5. Establishment of pre-treatment protocols for anti-coagulation assay=149,150,2
4-5. Fractionation of anti-coagulant=150,151,1
1. Partial purification and characterization of anti-coagulating fraction=150,151,3
4-6. Analysis of fibrinolytic activity of fermented soybeans=152,153,2
4-7. Measurement of antioxidant activity of fermented soybeans=153,154,2
4-8. Comparison of biological activities before and after fermentation of soybeans=155,156,1
1. Comparison of anti-dementia activity before and after fermentation=155,156,1
2. Compadson of anti-coagulant activity before and after fermentation=155,156,2
3. Comparison of fibrinolytic and antioxidant activity before and after fermentation=156,157,1
4-9. Studies on the large scale extraction of flavonoids from fermented soybeans=157,158,4
4-10. Investigation of mode of inhibitory action=161,162,1
1. IC50(이미지참조) value of active compounds=161,162,1
2. Investigation of inhibition pattern=161,162,2
4-11. Establishment of qualify control protocols by analyzing bologically active compounds in a trial products=162,163,1
1. Establishment of quaEty control protocols for fermented soybeans=162,163,2
2. Establishment of quality control protocols for vinegar containing isoflavone rich fraction=163,164,1
4-12. Establishment of expiration date by monitoring isoflavonoid contents=164,165,1
1. Comparison of isoflavonoid contents according to storage date in fermented soybean products=164,165,1
2. Comparison of isoflavonoid contents according to storage date in vinegar containing isoflavone=165,166,1
Chapter 5. Research goals and contribution in the related field=166,167,1
5-1. General plan for the research=166,167,1
5-2. Accomplishment of reasearch goal=167,168,1
1. Pirst sub-project=167,168,3
2. Second sub-project=169,170,3
Chapter 6. Application plans of the results in this project=172,173,1
6-1. Application fields and plans=172,173,1
1. Application fields=172,173,1
2. Application plans=172,173,1
6-2. Plans for distribution indusrialization,and transfer of technology=172,173,2
6-3. Additional plans for technical development=173,174,1
6-4. Application of the results=173,174,1
Chapter 7. Overseas information of science and technology collected during the research=174,175,2
Chapter 8. References=176,177,8
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