목차

[표제지]=0,1,1

제출문=1,2,2

보고서 초록=3,4,2

요약문=5,6,12

Summary=17,18,12

Contents=29,30,12

목차=41,42,10

제1장 연구개발과제의 개요=51,52,2

제2장 국내외 기술개발 현황=53,54,1

1. 국외의 기술동향 및 수준=53,54,1

2. 국내의 기술동향 및 수준=54,55,1

3. 국내외 기술의 종합평가=54,55,1

제3장 연구개발수행 내용 및 결과=55,56,1

제1절. 곡류 유래의 생물활성 다당류 Arabinoxylan 생산기술 개발=55,56,1

1-1. 미강 Arabinoxylan의 생산기술 및 면역증강활성=55,56,1

1. 서론=55,56,4

2. 실험 재료 및 방법=58,59,1

가. 미강=58,59,1

나. 미강 세포벽의 수용화=58,59,1

(1) 미강의 압출공정=58,59,1

(2) 미강의 탈지방, 탈전분, 탈단백질=58,59,1

(3) 일반 성분 분석=59,60,1

(4) 효소별 미강의 가수분해=59,60,1

(5) Water Solubility Index 측정=59,60,1

(6) 분자량 측정=59,60,2

(7) Phenolic Acids의 추출=60,61,1

(8) Phenolic Acids의 함량 측정=60,61,1

(9) 항산화 효과 측정=60,61,2

다. 미강 세포벽 다당류의 구조 분석=61,62,1

(1) Ultrafiltration에 의한 분리=61,62,1

(2) 구성당 조성 분석=61,62,1

(3) ¹H NMR Spectroscopy=61,62,1

(4) Methylation 분석=61,62,3

라. 미강 세포벽 다당류의 면역 활성=63,64,1

(1) 실험 동물=63,64,1

(2) 세포주=63,64,1

(3) Mouse 비장 림프구의 분리=63,64,1

(4) NK 세포의 분리 및 정제=63,64,2

(5) 복강 대식세포의 유도 및 분리=64,65,1

(6) INF-γ생성능 측정=64,65,1

(7) NK세포의 암세포에 대한 세포독성 측정=65,66,1

(8) 대식세포의 Phagocytic Activity 측정=65,66,1

(9) 통계처리=65,66,1

3. 결과 및 고찰=66,67,1

가. 미강 세포벽의 수용화=66,67,1

(1) 미강의 탈지방, 탈전분, 탈단백질=66,67,1

(2) 공정에 따른 WSI 및 구성당 조성=66,67,2

(3) 다당류의 분자량=68,69,1

(4) 공정에 따른 Phenolic Acids의 함량=68,69,3

(5) 공정에 따른 항산화 활성=70,71,1

나. Arabinoxylan의 구조 분석=70,71,1

(1) 구성당 조성=70,71,2

(2) ¹H NMR Spectrum 분석=71,72,2

(3) Methylation 분석=73,74,2

(4) Arabinoxylan의 당쇄구조 분석=75,76,1

다. Arabinoxylan의 면역 활성=75,76,1

(1) INF-γ 생성능=75,76,2

(2) NK 세포의 암세포에 대한 세포독성=77,78,1

(3) 대식세포의 Phagocytic Activity=78,79,2

4. 결론=80,81,1

1-2. 미강 Arabinoxylan의 암세포증식 억제효과=81,82,1

1. 서론=81,82,1

2. 실험 재료 및 방법=82,83,1

가. Rice Arabinoxylan 분리=82,83,1

(1) 미강의 압출공정=82,83,1

(2) 미강의 탈지방, 탈전분, 탈단백질=82,83,1

(3) 미강의 가수분해=82,83,1

(4) Ultrafiltration에 의한 분리=83,84,1

나. Rice Arabinoxylan의 림프구 면역증강 활성 측정=83,84,1

(1) 실험 동물=83,84,1

(2) 세포주=83,84,1

(3) Mouse 비장 림프구의 분리=83,84,1

(4) 림프구의 생존능=83,84,2

(5) 림프구의 암세포에 대한 세포독성=84,85,1

(6) 림프구의 Cytokine 생성량=84,85,1

(7) 통계처리=85,86,1

다. Rice Arabinoxylan의 대식세포 면역증강 활성 측정=85,86,1

(1) 실험 동몰=85,86,1

(2) 세포주=85,86,1

(3) Mouse 복강 대식세포의 유도 및 분리=85,86,1

(4) 대식세포의 생존능=85,86,2

(5) 대식세포의 Phagocytic Activity=86,87,1

(6) 대식세포의 Lysosomal Phosphatase Activity=86,87,1

(7) 대식세포의 Myeloperoxidase Activity=86,87,1

(8) 대식세포의 NO(Nitric Oxide) 생성량=86,87,1

(9) 대식세포의 H₂O₂(Hydrogen Peroxide) 생성량=86,87,2

(10) 대식세포의 Cytokine 생성량=87,88,1

(11) 통계처리=87,88,1

3. 결과 및 고찰=88,89,1

가. Rice Arabinoxylan의 림프구 면역증강 활성=88,89,1

(1) 림프구의 생존능=88,89,1

(2) 림프구의 암세포 사멸 활성=88,89,2

(3) 림프구의 Cytokine 발현=89,90,2

나. Rice Arabinoxylan의 대식세포 면역증강 활성=91,92,1

(1) 대식세포의 생존능=91,92,1

(2) 대식세포의 암세포 사멸 활성=91,92,1

(3) 대식세포의 Phagocytic Activity=91,92,2

(4) 대식세포의 Lysosomal Phosphatase 및 Myeloperoxidase 활성=92,93,2

(5) 대식세포의 NO 및 H₂O₂ 생성=94,95,1

(6) 대식세포의 Cytokine 발현=95,96,2

4. 결론=97,98,1

1-3. 밀 Arabinoxylan의 면역세포 활성화 작용=98,99,1

1. 서론=98,99,1

2. 실험 재료 및 방법=98,99,1

가. 재료=98,99,1

나. 실험동물 및 세포주=98,99,2

다. 비장에서 림프구의 분리=99,100,1

라. 복강 대식세포의 유도 및 분리=99,100,1

마. 세포 생존능 측정=99,100,1

바. 암세포에 대한 대식세포의 세포독성시험=99,100,1

사. Phagocytic Index 측정=99,100,2

아. Lysosomal Phosphatase 활성 측정=100,101,1

자. Myeloperoxidase 활성 측정=100,101,1

차. Nitric Oxide(NO) 생성량 측정=100,101,1

카. Hydrogen Peroxide(H₂O₂) 생성량 측정=100,101,2

타. Superoxide(O₂) Assay : NBT Reduction=101,102,1

파. 통계처리=101,102,1

3. 결과 및 고찰=101,102,1

가. 밀 Arabinoxylan에 의한 마우스 비장 림프구 생존능=101,102,3

나. 밀 Arabinoxylan이 마우스 복강 대식세포 생존에 미치는 영향=103,104,1

다. 밀 Arabinoxylan이 마우스 복강 대식세포의 암세포 살해능에 미치는 영향=103,104,3

라. 밀 Arabinoxylan이 마우스 복강 대식세포의 식세포 작용에 미치는 영향=106,107,1

마. 밀 Arabinoxylan이 마우스 복강 대식세포의 산화물 생성에 미치는 영향=106,107,5

제2절. 인삼박 다당체와 올리고당의 생산기술 및 생물활성=111,112,1

1. 서론=111,112,1

가. 인삼=111,112,2

나. 대식세포(Macrophage)의 면역활성=112,113,2

다. 장내미생물의 증식작용=113,114,2

2. 실험 재료 및 방법=114,115,1

가. 인삼박 다당체의 복강 대식세포 활성화에 관한 실험=114,115,1

(1) 인삼박 다당체의 분리=114,115,1

(가) 인삼박=114,115,1

(나) 효소처리 다당체의 분리=114,115,1

(다) 압출공정 다당체의 분리=114,115,2

(라) 인삼박 다당체의 분자량 및 조성분석=116,117,1

(2) 복강 대식세포의 활성화에 관한 실험=116,117,1

(가) 실험동물 및 시약=116,117,1

(나) 복강 대식세포의 유도 및 분리=116,117,2

(다) Lysosomal Phosphatase Activity 측정=117,118,1

(라) Nitric Oxide(NO) 생성량 측정=117,118,1

(마) Hydrogen Peroxide(H₂O₂) 생성량 측정=117,118,2

(바) Survival Effect 측정=118,119,1

(사) Phagocytic Activity 측정=118,119,2

(아) In Vivo에서의 대식세포 활성화=119,120,1

(자) 통계처리=119,120,1

나. 인삼박 올리고당이 장내미생물에 미치는 효과에 관한 실험=119,120,1

(1) 인삼박 올리고당의 분리=119,120,1

(가) 수용성 효소가수분해물의 올리고당 수율=119,120,2

(나) 인삼박 올리고당 생산의 최적조건=120,121,1

(다) 인삼박 올리고당의 분리=120,121,1

(2) 장내미생물의 생육 효과=121,122,1

(가) 사용균주=121,122,1

(나) pH 및 유기산 생성량 측정=121,122,1

(다) 상업용 올리고당과의 비교 실험=121,122,1

3. 결과 및 고찰=121,122,1

가. 인삼박 다당체의 복강 대식세포 활성화 효과=121,122,1

(1) 다당체의 성분조성 및 분자량=121,122,3

(2) Lysosomal Phosphatase Activity=123,124,3

(3) NO 및 H₂O₂ 생성=125,126,3

(4) Survival Effect=127,128,2

(5) Phagocytic Activity=128,129,1

(6) In Vivo에서의 대식세포 활성 효과=128,129,3

나. 인삼박 올리고당의 장내미생물 생육 효과=130,131,1

(1) 인삼박 올리고당의 최적조건 및 수율=130,131,4

(2) 인삼박 올리고당의 분리=133,134,1

(3) Bifidogenic Effect=133,134,3

(4) 상업용 올리고당과의 활성 비교=135,136,4

4. 결론=139,140,1

제3절. 압출공정 기술을 이용한 불용성 식물세포벽의 수용화 기술=140,141,1

3-1. 압출공정을 이용한 인삼박 다당류의 생산기술=140,141,1

1. 서론=140,141,1

2. 실험 재료 및 방법=140,141,1

가. 인삼박의 압출공정=140,141,2

나. 수용성 다당류의 분리=141,142,1

다. 유론산 및 중성당 함량 분석=141,142,1

라. 이온교환 크로마토그래피=141,142,1

마. 중성당 조성 분석=142,143,1

3. 결과 및 고찰=142,143,1

가. 수용성 다당체와 펙틴의 수율에 대한 SME의 영향=142,143,2

나. 수용성 다당체의 당 조성=143,144,1

다. 이온교환 크로마토그래피=143,144,4

3-2. 사과박으로부터 압출공정을 이용한 펙틴 다당류의 생산기술=147,148,1

1. 서론=147,148,1

2. 실험 재료 및 방법=147,148,1

가. 재료=147,148,1

나. 사과박의 압출공정=147,148,2

다. 식이섬유=148,149,1

라. 수용성 다당류의 분리=148,149,1

마. 무수갈락트론산의 측정=148,149,1

바. 고유점도=149,150,1

사. 통계적 분석=149,150,1

3. 결과 및 고찰=149,150,1

가. 수용성 다당류(Soluble Dietary Fiber, SDF)=149,150,3

나. 무수갈락트론산의 수율(YAGA)(이미지참조)=151,152,1

다. 고유점도([η])=152,153,1

라. AGA의 수율×고유점도[(Y[η])AGA](이미지참조)=152,153,2

제4절. 신규 생리활성 다당류 소재 개발=154,155,1

4-1. Curcuma Xanthorrhiza 유래 면역증강 다당류=154,155,1

1. 서론=154,155,2

2. 실험 재료 및 방법=155,156,1

가. 다당류의 추출 및 분석=155,156,1

(1) 다당류의 추출=155,156,1

(2) 분자량 측정=155,156,2

(3) 구성당 조성 분석=156,157,2

나. 다당류의 면역 활성 - In Vitro=157,158,1

(1) 세포주=157,158,1

(2) RAW264.7 세포에 의해 생성되는 NO 측정=157,158,1

(3) PGE₂의 측정=157,158,2

(4) Western Blotting=158,159,1

(5) RT-PCR=158,159,2

다. 다당류의 면역 활성 - In Vivo=159,160,1

(1) 실험 동물=159,160,1

(2) Mouse 비장 림프구의 분리=159,160,1

(3) 복강 대식세포의 유도 및 분리=159,160,1

(4) Survival Effect 측정=159,160,2

(5) Nitric Oxide(NO) 생성량 측정=160,161,1

(6) Splenocyte의 Proliferation 측정=160,161,1

(7) Western Blotting=160,161,2

(8) 통계처리=161,162,1

3. 결과 및 고찰=161,162,1

가. 다당류의 추출 및 분석=161,162,1

(1) 분자량 측정=161,162,1

(2) 구성당 조성 분석=161,162,2

나. 다당류의 면역 활성 - In Vitro=162,163,1

(1) RAW264.7 Cells에서의 NO 생성능=162,163,1

(2) PGE₂의 측정=162,163,2

(3) Curcuman-X가 iNOS 생성에 미치는 영향=164,165,1

(4) Curcuman-X가 COX-2 생성에 미치는 영향=164,165,1

(5) Curcuman-X가 IκB에 미치는 영향=164,165,4

다. 다당류의 면역 활성 - In Vivo=167,168,1

(1) Survival Effect 및 Splenocyte의 Proliferation 측정=167,168,1

(2) Nitric Oxide(NO) 생성량 측정=168,169,2

(3) Peritoneal Macrophage에서 Curcuman-X가 iNOS와 COX-2에 미치는 영향=169,170,2

4. 결론=171,172,1

4-2. Yam(Dioscorea Batatas) 유래 면역증강 다당류=172,173,1

1. 서론=172,173,1

가. Yam에서 분리된 YMP에 대한 면역자극활성=172,173,1

나. Yam에서 분리된 YMP에 대한 산화반응과 사이토카인 생성의 증강=172,173,2

2. 실험 재료 및 방법=173,174,1

가. Yam에서 분리된 YMP에 대한 면역자극활성=173,174,1

(1) 식물 재료=173,174,1

(2) 동물과 세포 배양=173,174,1

(3) Yam Mucopolysacchride(YMP)의 분리=174,175,1

(4) 비장 림프구의 분리=174,175,1

(5) 복막 대식세포의 분리와 배양조건=174,175,1

(6) 세포 생존 능력=175,176,1

(7) 비장세포가 매개된 독성 분석=175,176,1

(8) ELISA에 의한 사이토카인 결정=175,176,1

(9) 복막 대식세포의 Uptake 능력 측정=175,176,1

(10) 대식세포 리소좀의 탈인산화효소 활성 분석=175,176,2

(11) 통계처리=176,177,1

나. Yam에서 분리된 YMP에 대한 산화반응과 사이토카인 생성의 증강=176,177,1

(1) 동물과 세포 배양=176,177,1

(2) Yam Mucopolysaccharide(YMP)의 분리=176,177,1

(3) 복막 대식세포의 분리와 배양조건=176,177,2

(4) 대식세포가 매개된 독성 분석=177,178,1

(5) 아질산염(Nitrite)의 측정=177,178,1

(6) 과산화수소(H₂O₂)에 대한 분석=177,178,1

(7) Superoxide 분석 : NBT 환원=177,178,2

(8) Myeloperoxidase 활성의 측정=178,179,1

(9) ELISA에 의한 사이토카인 결정=178,179,1

(10) 통계 처리=178,179,1

3. 결과=178,179,1

가. Yam에서 분리된 YMP에 대한 면역자극활성=178,179,4

나. Yam에서 분리된 YMP에 대한 산화반응과 사이토카인 생성의 증강=181,182,8

4. 결론=188,189,2

제5절. 생물활성 다당류 복합물 제조기술 개발=190,191,1

5-1. 면역세포 활성화 다당류 복합물 제조기술=190,191,1

1. 서론=190,191,2

2. 실험 재료 및 방법=191,192,1

가. 재료=191,192,1

나. 미강 Arabinoxylan의 분리=191,192,2

다. 인삼박 다당체의 분리=192,193,1

라. 실험동물 및 세포주=192,193,1

마. 비장에서 림프구의 분리=192,193,2

바. 복강 대식세포의 유도 및 분리=193,194,1

사. 세포 생존능 측정=193,194,1

아. 암세포에 대한 면역세포의 세포독성시험=193,194,1

자. Cytokine 생성능 측정=193,194,2

차. 복강 대식세포의 Phagocytic Activity 측정=194,195,1

카. 복강 대식세포의 Lysosomal Phosphatase 활성 측정=194,195,1

타. 복강 대식세포의 Myeloperoxidase 활성 측정=194,195,1

파. 복강 대식세포의 Nitric Oxide(NO) 생성능 측정=194,195,1

하. 복강 대식세포의 H₂O₂ 생성능 측정=194,195,1

3. 결과 및 고찰=195,196,1

가. 비장 림프구 생존능=195,196,1

나. 비장 림프구의 암세포 살해능=195,196,1

다. 비장 림프구의 IL-2 생성능=195,196,4

라. 복강 대식세포의 생존능=198,199,1

마. 복강 대식세포의 암세포 살해능=198,199,1

바. 복강 대식세포의 Phagocytic Activity=198,199,1

사. 복강 대식세포의 Lysosomal Phosphatase Activity=198,199,6

아. 복강 대식세포의 Myeloperoxidase Activity=203,204,1

자. 복강 대식세포의 반응성 질소종(Reactive Nitrogen Intermediates : RNI) 분비능=203,204,4

차. 복강 대식세포의 반응성 산소종(Reactive Oxygen Intermediates : ROI) 분비능=207,208,2

4. 결론=209,210,2

5-2. Arabinogalactan과 Fucoidan을 이용한 신규 면역증가 다당류 복합물 제조=211,212,1

1. 서론=211,212,2

2. 실험 재료 및 방법=212,213,1

가. 실험 동물 및 세포배양=212,213,1

나. 비장 림프구와 복강 대식세포의 분리=212,213,1

다. 다당류의 Mitogenic Activity 측정=212,213,2

라. 면역세포가 유도하는 세포독성 측정=213,214,1

마. 대식세포의 Phagocytic Activity 측정=213,214,1

바. 대식세포의 Lysosomal Phosphatase와 Myeloperoxidase 활성 측정=213,214,1

사. 대식세포에 의한 Nitrite와 Hydrogen Peroxide(H₂O₂) 생성량 측정=213,214,2

아. ELISA를 이용한 Cytokine 생성량 측정=214,215,1

자. 통계처리=214,215,1

3. 결과 및 고찰=214,215,1

가. 면역세포 생존율과 암세포에 대한 세포독성 측정=214,215,2

나. 복강 대식세포의 Phagocytosis와 자유 라디칼 및 Cytokine의 생성=215,216,4

4. 결론=219,220,2

제6절. 생물고분자 압출공정 설계 및 물성변환 기술 개발=221,222,1

6-1. 생물고분자 압출공정장치 설계=221,222,1

1. 압출성형 시스템=221,222,1

가. 스크루=221,222,1

나. 물 공급 장치(정압 유지)=221,222,2

다. 기타 부품=223,224,1

2. 컴퓨터 계측 및 제어 시스템=223,224,2

가. 주 Controller=224,225,1

나. 온도 계측=224,225,2

다. 압력 계측=225,226,1

라. 전력 계측=225,226,1

마. 유량 제어=225,226,1

바. 모터 제어=225,226,1

사. 전기 히터 및 냉각수 Cooler 제어=225,226,1

아. Auto Start-Up 제어=225,226,1

자. 운용 프로그램=225,226,5

6-2. 압출공정에 의한 κ-Carrageenan/Agar 혼합젤의 물성 변화=230,231,1

1. 서론=230,231,1

2. 실험 재료 및 방법=230,231,1

가. Extrusion=230,231,2

나. Determination Of Young's Modulus=231,232,1

다. Determination Of Gel Time=231,232,1

라. Determination Of Molecular Weight=231,232,2

마. Determination Of Extrusion SME=232,233,1

3. 결과 및 고찰=232,233,8

4. 결론=239,240,1

6-3. κ-Carrageenan/Agar 혼합젤 유형의 유변학적 분석=240,241,1

1. 서론=240,241,2

2. 실험 재료 및 방법=241,242,1

가. Materials=241,242,1

나. Young's Modulus=241,242,1

다. Gel Time=241,242,2

3. 결과 및 고찰=242,243,6

4. 결론=247,248,2

6-4. κ-Carrageenan/전분 복합젤 제조를 위한 압출공정변수 분석=249,250,1

1. 서론=249,250,1

2. 실험 재료 및 방법=249,250,1

가. 재료=249,250,1

나. 압출공정=249,250,2

다. Torque와 SME 측정=250,251,1

라. Young's Modulus=250,251,2

마. Fracture 특성=251,252,1

바. 반응표면분석=252,253,1

3. 결과 및 고찰=252,253,5

6-5. 압출공정된 κ-Carrageenan/전분 복합젤의 물성=257,258,1

1. 서론=257,258,1

2. 실험 재료 및 방법=257,258,1

가. 압출공정=257,258,1

나. Gel Time=258,259,1

다. Fracture 특성=258,259,1

라. Young's Modulus=258,259,3

마. Dynamic Modulus=260,261,1

3. 결과 및 고찰=260,261,1

가. 젤화(Gelation)=260,261,2

나. Fracture 특성=261,262,2

다. Young's Modulus=263,264,1

라. Dynamic Modulus=263,264,4

제4장 목표달성도 및 관련분야에의 기여도=267,268,1

1. 목표 달성도=267,268,2

2. 관련분야에의 기여도(공공기능)=269,270,2

제5장 연구개발결과의 활용계획=271,272,2

제6장 연구개발과정에서 수집한 해외과학기술정보=273,274,2

제7장 참고문헌=275,276,34

특정연구개발사업 연구결과 활용계획서=309,310,2

[첨부1] 연구결과 활용계획서=311,312,16

[첨부2] 기술 요약서=327,328,6

영문목차

[title page]=0,1,17

Summary=17,18,12

Contents=29,30,22

Chapter 1. Outline Of Research=51,52,2

Chapter 2. Trends In International And Domestic Research And Development=53,54,1

1. Trend In International Technology=53,54,1

2. Trend In Domestic Technology=54,55,1

3. Comprehensive Evaluation Of International And Domestic Technology=54,55,1

Chapter 3. Contents And Results Of Research=55,56,1

Section 1. Development Of Production Technology Of Bioactive Arabinoxylan Derived From Cereals=55,56,1

1-1. Manufacturing Technology And Immunostimulating Activity Of Arabinoxylan From Rice Bran=55,56,1

1. Introduction=55,56,4

2. Materials And Methods=58,59,1

a. Rice Bran=58,59,1

b. Solubilization Of Cell Wall In Rice Bran=58,59,1

(1) Extrusion Of Rice Bran=58,59,1

(2) Defat, Destarch And Deprotein Of Rice Bran=58,59,1

(3) Analysis Of Proximate Components=59,60,1

(4) Enzymatic Hydrolysis Of Rice Bran=59,60,1

(5) Water Solubility Index=59,60,1

(6) Molecular Weight=59,60,2

(7) Extraction Of Phenolic Acids=60,61,1

(8) Analysis Of Phenolic Acids=60,61,1

(9) Antioxidant Activity=60,61,2

c. Structural Analysis Of Cell Wall Polysaccharides In Rice Bran=61,62,1

(1) Isolation By Ultrafiltration=61,62,1

(2) Sugar Analysis=61,62,1

(3) ¹H NMR Spectroscopy=61,62,1

(4) Methylation Analysis=61,62,3

d. Immunological Activity Of Cell Wall Polysaccharides In Rice Bran=63,64,1

(1) Experimental Animals=63,64,1

(2) Cell Lines=63,64,1

(3) Isolation Of Mouse Spleen Lymphocyte=63,64,1

(4) Isolation And Purification Of NK Cells=63,64,2

(5) Isolation Of Abdominal Cavity Macrophage=64,65,1

(6) INF-γ Production=64,65,1

(7) Cytotoxity Of NK Cells Against Cancer Cells=65,66,1

(8) Phagocytic Activity Of Macrophages=65,66,1

(9) Statistical Analysis=65,66,1

3. Results And Discussion=66,67,1

a. Solubilization Of Cell Walls In Rice Bran=66,67,1

(1) Defat, Destarch And Deprotein Of Rice Bran=66,67,1

(2) Water Solubility Index And Sugar Components According To The Process=66,67,2

(3) Molecular Weight Of Polysaccharides=68,69,1

(4) Contents In Phenolic Acids According To The Process=68,69,3

(5) Antioxidant Activity According To The Process=70,71,1

b. Structural Analysis Of Arabinoxylan=70,71,1

(1) Sugar Components=70,71,2

(2) Analysis Of ¹H NMR Spectrum=71,72,2

(3) Methylation Analysis=73,74,2

(4) Structural Analysis Of Sugars Of Arabinoxylan=75,76,1

c. Immunological Activity Of Arabinoxylan=75,76,1

(1) INF-γ Production=75,76,2

(2) Cytotoxity Of NK Cells Against Cancer Cells=77,78,1

(3) Phagocytic Activity Of Macrophages=78,79,2

4. Conclusions=80,81,1

1-2. Inhibitory Effect Of Rice Bran Arabinoxylan On Tumor Growth=81,82,1

1. Introduction=81,82,1

2. Materials And Methods=82,83,1

a. Rice Bran=82,83,1

(1) Extrusion Of Rice Bran=82,83,1

(2) Defat, Destarch And Deprotein Of Rice Bran=82,83,1

(3) Enzymatic Hydrolysis Of Rice Bran=82,83,1

(4) Isolation By Ultrafiltration=83,84,1

b. Immunostimulating Activation Of Mouse Spleen Lymphocyte By Rice Arabinoxylan=83,84,1

(1) Experimental Animals=83,84,1

(2) Cell Lines=83,84,1

(3) Isolation Of Mouse Spleen Lymphocyte=83,84,1

(4) Survival Effect Of Mouse Spleen Lymphocyte=83,84,2

(5) Cytotoxity Of Mouse Spleen Lymphocyte Against Cancer Cells=84,85,1

(6) Cytokine Production Of Mouse Spleen Lymphocyte=84,85,1

(7) Statistical Analysis=85,86,1

c. Immunostimulating Activation Of Abdominal Cavity Macrophage By Rice Arabinoxylan=85,86,1

(1) Experimental Animals=85,86,1

(2) Cell Lines=85,86,1

(3) Isolation Of Abdominal Cavity Macrophage=85,86,1

(4) Survival Effect Of Macrophage=85,86,2

(5) Phagocytic Activity Of Macrophages=86,87,1

(6) Lysosomal Phosphatase Activity=86,87,1

(7) Mywloperoxidase Activity Of Macrophage=86,87,1

(8) Nitric Oxide(NO) Production=86,87,1

(9) Hydrogen Peroxide(H₂O₂) Production=86,87,2

(10) Cytokine Production Of Macrophage=87,88,1

(11) Statistical Analysis=87,88,1

3. Results And Discussion=88,89,1

a. Immunostimulating Activation Of Mouse Spleen Lymphocyte By Rice Arabinoxylan=88,89,1

(1) Survival Effect Of Mouse Spleen Lymphocyte=88,89,1

(2) Cytotoxity Of Mouse Spleen Lymphocyte Against Cancer Cells=88,89,2

(3) Cytokine Production Of Mouse Spleen Lymphocyte=89,90,2

b. Immunostimulating Activation Of Abdominal Cavity Macrophage By Rice Arabinoxylan=91,92,1

(1) Survival Effect Of Macrophage=91,92,1

(2) Cytotoxity Of Macrophage Against Cancer Cells=91,92,1

(3) Phagocytic Activity Of Macrophages=91,92,2

(4) Lysosomal Phosphatase And Myeloperoxidase Activity Of Macrophage=92,93,2

(5) Nitric Oxide(NO) And Hydrogen Peroxide(H₂O₂) Production=94,95,1

(6) Cytokine Production Of Macrophage=95,96,2

4. Conclusions=97,98,1

1-3. Immune Cell Stimulating Activity Of Wheat Arabinoxylan=98,99,1

1. Introduction=98,99,1

2. Materials And Methods=98,99,1

a. Materials=98,99,1

b. Experimental Animals And Cell Lines=98,99,2

c. Isolation Of Mouse Spleen Lymphocyte=99,100,1

d. Isolation Of Abdominal Cavity Macrophage=99,100,1

e. Survival Effect=99,100,1

f. Cytotoxity Of Macrophage Against Cancer Cells=99,100,1

g. Determination Of Phagocytic Index=99,100,2

h. Lysosomal Phosphatase Activity=100,101,1

i. Myeloperoxidase Activity Of Macrophage=100,101,1

j. Nitric Oxide(NO) Production=100,101,1

k. Hydrogen Peroxide(H₂O₂) Production=100,101,2

l. Superoxide(O₂)Assay : NBT Reduction=101,102,1

m. Statistical Analysis=101,102,1

3. Results And Discussion=101,102,1

a. Survival Effect Of Mouse Spleen Lymphocyte By Wheat Arabinoxylan=101,102,3

b. Survival Effect Of Abdominal Cavity Macrophage By Wheat Arabinoxylan=103,104,1

c. Cytotoxicity Of Macrophage Against Cancer Cells By Wheat Arabinoxylan=103,104,3

d. Phagocytic Activity Of Macrophages By Wheat Arabinoxylan=106,107,1

e. Cytokine Production Of Macrophage By Wheat Arabinoxylan=106,107,5

Section 2. Manufacturing Technology And Biological Activities Of Polysaccharides And Oligosaccharides From Ginseng Marc=111,112,1

1. Introduction=111,112,1

a. Ginseng=111,112,2

b. Immunological Activity Of Macrophages=112,113,2

c. Proliferation Of Intestinal Microflora=113,114,2

2. Materials And Methods=114,115,1

a. Activation Of Abdominal Cavity Macrophage By Ginseng Polysaccharides=114,115,1

(1) Isolation Of Ginseng Polysaccharides=114,115,1

(a) Ginseng Marc=114,115,1

(b) Isolation Of Ginseng Polysaccharides By Enzyme Treatment=114,115,1

(c) Isolation Of Ginseng Polysaccharides By Extrusion=114,115,2

(d) Molecular Weight And Chemical Composition Of Ginseng Polysaccharides=116,117,1

(2) Activation Of Abdominal Cavity Macrophage=116,117,1

(a) Experimental Animals And Reagents=116,117,1

(b) Isolation Of Abdominal Cavity Macrophage=116,117,2

(c) Lysosomal Phosphatase Activity=117,118,1

(d) Nitric Oxide(NO) Production=117,118,1

(e) Hydrogen Peroxide(H₂O₂) Production=117,118,2

(f) Survival Effect=118,119,1

(g) Phagocytic Activity=118,119,2

(h) In Vivo Activation Of Macrophages=119,120,1

(i) Statistical Analysis=119,120,1

b. Effect Of Ginseng Oligosaccharides On Intestinal Microorganisms=119,120,1

(1) Isolation Of Ginseng Oligosaccharides=119,120,1

(a) Yield Of Ginseng Oligosaccharides Of Soluble Enzymatic Hydrolysates=119,120,2

(b) Optimum Production Of Ginseng Oligosaccharides=120,121,1

(c) Isolation Of Ginseng Oligosaccharides=120,121,1

(2) Growth Effect Of Intestinal Microorganisms=121,122,1

(a) Strains=121,122,1

(b) Ph And Organic Acid Production=121,122,1

(c) Comparison With Commercial Oligosaccharides=121,122,1

3. Results And Discussion=121,122,1

a. Activation Of Abdominal Cavity Macrophage By Ginseng Polysaccharides=121,122,1

(1) Molecular Weight And Chemical Composition Of Ginseng Polysaccharides=121,122,3

(2) Lysosomal Phosphatase Activity=123,124,3

(3) No And H202 Production=125,126,3

(4) Survival Effect=127,128,2

(5) Phagocytic Activity=128,129,1

(6) In Vivo Activation Of Macrophages=128,129,3

b. Growth Effect Of Ginseng Oligosaccharides On Intestinal Microorganisms=130,131,1

(1) Optimum Production Condition And Yield Of Ginseng Oligosaccharides=130,131,4

(2) Isolation Of Ginseng Oligosaccharides=133,134,1

(3) Bifidogenic Effect=133,134,3

(4) Comparison With Commercial Oligosaccharides=135,136,4

4. Conclusions=139,140,1

Section 3. Solubilization Of Plant Cell Wall By Extrusion=140,141,1

3-1. Extraction Of Polysaccharides From Extruded Ginseng Fiber=140,141,1

1. Introduction=140,141,1

2. Materials And Methods=140,141,1

a. Extrusion Of Ginseng Marc=140,141,2

b. Isolation Of Soluble Polysaccharides=141,142,1

c. Measurment Of The Content Of Uronic Acid And Neutral Sugars=141,142,1

d. Ion Exchange Chromatography=141,142,1

e. Neutral Sugar Analysis=142,143,1

3. Results And Discussion=142,143,1

a. The Effect Of Sme On The Yield Of Wsp And Pectin=142,143,2

b. Sugar Composition Of Wsp=143,144,1

c. Ion Exchange Chromatography=143,144,4

3-2. Extraction Of Pectin Polysaccharides From Extruded Apple Pomace=147,148,1

1. Introduction=147,148,1

2. Materials And Methods=147,148,1

a. Materials=147,148,1

b. Extrusion Of Apple Pomace=147,148,2

c. Dietary Fiber=148,149,1

d. Fractionation Of Water Soluble Polysaccharides=148,149,1

e. Anhydrogalacturonic Acid=148,149,1

f. Intrinsic Viscosity=149,150,1

g. Statistical Analysis=149,150,1

3. Results And Discussion=149,150,1

a. Soluble Dietary Fiber(SDF)=149,150,3

b. Yield Of Anhydrogalacturonic Acid(YAGA)(이미지참조)=151,152,1

c. Intrinsic Viscosity([η])=152,153,1

d. Yield Of AGA×Intrinsic Viscosity[(Y[η]AGA)(이미지참조)=152,153,2

Section 4. Development Of New Physiologically Active Polysaccharides=154,155,1

4-1. Immunostimulating Activity Of Polysaccharides Isolated From Curcuma Xanthorrhiza=154,155,1

1. Introduction=154,155,2

2. Materials And Methods=155,156,1

a. Extraction And Analysis Of Polysaccharides=155,156,1

(1) Extraction Of Polysaccharides=155,156,1

(2) Molecular Weight=155,156,2

(3) Monosaccharide Composition=156,157,2

b. Immunostimulating Activity Of Polysaccharides-In Vitro=157,158,1

(1) Cell Lines=157,158,1

(2) Nitric Oxide(NO) Production=157,158,1

(3) PGE₂ Production=157,158,2

(4) Western Blotting=158,159,1

(5) RT-PCR=158,159,2

c. Immunostimulating Activity Of Polysaccharides-In Vivo=159,160,1

(1) Experimental Animals=159,160,1

(2) Isolation Of Mouse Spleen Lymphocyte=159,160,1

(3) Isolation Of Abdominal Cavity Macrophage=159,160,1

(4) Survival Effect=159,160,2

(5) Nitric Oxide(NO) Production=160,161,1

(6) Proliferation Of Splenocyte=160,161,1

(7) Western Blotting=160,161,2

(8) Statistical Analysis=161,162,1

3. Results And Discussion=161,162,1

a. Extraction And Analysis Of Polysaccharides=161,162,1

(1) Molecular Weight=161,162,1

(2) Monosaccharide Composition=161,162,2

b. Immunostimulating Activity Of Polysaccharides - In Vitro=162,163,1

(1) Nitric Oxide(NO) Production=162,163,1

(2) PGE₂ Production=162,163,2

(3) Activation Of iNOS In Response To Curcuman-X=164,165,1

(4) Activation Of COX-2 In Response To Curcuman-X=164,165,1

(5) Activation Of Inb In Response To Curcuman-X=164,165,4

c. Immunostimulating Activity Of Polysaccharides - In Vivo=167,168,1

(1) Survival Effect And Proliferation Of Splenocyte=167,168,1

(2) Nitric Oxide(NO) Production=168,169,2

(3) Activation Of iNOS And COX-2 In Response To Curcuman-X=169,170,2

4. Conclusions=171,172,1

4-2. Immunostimulating Activity Of Polysaccharides Isolated From Yam(Dioscorea Batatas)=172,173,1

1. Introduction=172,173,1

a. Immunostimulating Activity Of YMP Isolated From Yam=172,173,1

b. Enhancement Of Oxidative Response And Cytokine Production Of YMP Isolated From Yam=172,173,2

2. Materials And Methods=173,174,1

a. Immunostimulating Activity Of YMP Isolated From Yam=173,174,1

(1) Plant Material=173,174,1

(2) Experimental Animals And Cell Lines=173,174,1

(3) Preparation Of Yam Mucopolysaccharide=174,175,1

(4) Preparation Of Splenic Lymphocytes=174,175,1

(5) Isolation Of Peritoneal Macrophage And Culture Conditions=174,175,1

(6) Cell Viability=175,176,1

(7) Splenocyte-Mediated Cytotoxicity Assay=175,176,1

(8) Cytokine Determination By Elisa=175,176,1

(9) Measurement Of Uptaking Capacity Of Peritoneal Macrophages=175,176,1

(10) Assay Of Macrophage Lysosomal Phosphatase Activity=175,176,2

(11) Statistical Analysis=176,177,1

b. Enhancement Of Oxidative Response And Cytokine Production Of YMP Isolated From Yam=176,177,1

(1) Experimental Animals And Cell Lines=176,177,1

(2) Preparation Of Yam Mucopolysaccharide=176,177,1

(3) Isolation Of Peritoneal Macrophage And Culture Conditions=176,177,2

(4) Macrophage-Mediated Cytotoxicity Assay=177,178,1

(5) Measurement Of Nitrite=177,178,1

(6) Hydrogen Peroxide(H₂O₂) Production=177,178,1

(7) Superoxide(O₂) Assay: NBT Reduction=177,178,2

(8) Measurement Of Myeloperoxidase Activity=178,179,1

(9) Cytokine Determination By Elisa=178,179,1

(10) Statistical Analysis=178,179,1

3. Results And Discussion=178,179,1

a. Inununostimulating Activity Of YMP Isolated From Yam=178,179,4

b. Enhancement Of Oxidative Response And Cytokine Production Of YMP Isolated From Yam=181,182,8

4. Conclusions=188,189,2

Section 5. Development Of Bioactive Polysaccharide Complexes=190,191,1

5-1. Development Of Immunostimulating Polysaccharide Complexes=190,191,1

1. Introduction=190,191,2

2. Materials And Methods=191,192,1

a. Materials=191,192,1

b. Preparation Of Rice Arabinoxylan=191,192,2

c. Isolation Of Ginseng Polysaccharides=192,193,1

d. Experimental Animals And Cell Lines=192,193,1

e. Isolation Of Mouse Spleen Lymphocyte=192,193,2

f. Isolation Of Abdominal Cavity Macrophage=193,194,1

g. Survival Effect=193,194,1

h. Immune Cell-Mediated Cytoxicity=193,194,1

i. Cytokine Determination By ELISA=193,194,2

j. Determination Of Phagocytotic Activity=194,195,1

k. Lysosomal Phosphatase Activity=194,195,1

l. Myeloperoxidase Activity Of Macrophage=194,195,1

m. Nitric Oxide(NO) Production=194,195,1

N. Hydrogen Peroxide(H₂O₂) Production=194,195,1

3. Results And Discussion=195,196,1

a. Survival Effect Of Mouse Spleen Lymphocyte=195,196,1

b. Tumoricidal Activity Of Mouse Spleen Lymphocyte=195,196,1

c. IL-2 Production Of Spleen Lymphocytes=195,196,4

d. Survival Effect Of Mouse Peritoneal Macrophages=198,199,1

e. Tumoricidal Activity Of Peritoneal Macrophages=198,199,1

f. Phagocytic Activity Of Peritoneal Macrophages=198,199,1

g. Lysosomal Phosphatase Activity Of Peritoneal Macrophages=198,199,6

h. Myeloperoxidase Activity Of Peritoneal Macrophages=203,204,1

i. Reactive Nitrogen Intermediates(RNI) Production Of Peritoneal Macrophages=203,204,4

j. Reactive Oxygen Intermediates(ROI) Production Of Peritoneal Macrophages=207,208,2

4. Conclusions=209,210,2

5-2. Immunostimulating Activity Of Arabinogalactan And Fucoidan=211,212,1

1. Introduction=211,212,2

2. Materials And Methods=212,213,1

a. Experimental Animals And Cell Lines=212,213,1

b. Isolation Of Splenic Lymphocytes And Peritoneal Macrophages=212,213,1

c. Mitogenic Activity Assay=212,213,2

d. Immune Cell-Mediated Cytotoxicity=213,214,1

e. Phagocytic Activity=213,214,1

f. Lysosomal Phosphatase And Myeloperoxidase Activity Of Macrophage=213,214,1

g. Nitric Oxide(NO) And Hydrogen Peroxide(H₂O₂) Production=213,214,2

h. Cytokine Determination By ELISA=214,215,1

i. Statistical Analysis=214,215,1

3. Results And Discussion=214,215,1

a. Assessment Of Stimulation Of Immune Cell Viability And Cytotoxic Activity Against Cancer Cell=214,215,2

b. Phagocytosis And Production Of Free Radicals And Cytokines In Peritoneal Macrophage=215,216,4

4. Conclusions=219,220,2

Section 6. Design Of Extruder For Biopolymers And Changes In Their Physical Properties=221,222,1

6-1. Design Of Extrusion For Biopolymers=221,222,1

1. Extrusion System=221,222,1

a. Screw=221,222,1

b. Water Supply Apparatus=221,222,2

c. Other Accessories=223,224,1

2. Computer Measurements And Control Systems=223,224,2

a. Main Controller=224,225,1

b. Temperature Measurement=224,225,2

c. Pressure Measurement=225,226,1

d. Electric Power Measurement=225,226,1

e. Flow Rate Measurement=225,226,1

f. Motor Control=225,226,1

g. Electric Heater And Cooling Water Cooler Control=225,226,1

h. Auto Start-Up Control=225,226,1

i. Operation Program=225,226,5

6-2. Changes In Physical Properties Of κ-Carrageenan/Agar Mixed Gels By Extrusion Process=230,231,1

1. Introduction=230,231,1

2. Materials And Methods=230,231,1

a. Extrusion=230,231,2

b. Young's Modulus=231,232,1

c. Gel Time=231,232,1

d. Molecular Weight=231,232,2

e. SME=232,233,1

3. Results And Discussion=232,233,8

4. Conclusion=239,240,1

6-3. Rheological Analysis Of κ-Carrageenan/Agar Mixed Gels=240,241,1

1. Introduction=240,241,2

2. Materials And Methods=241,242,1

a. Materials=241,242,1

b. Young's Modulus=241,242,1

c. Gelling Time=241,242,2

3. Results And Discussion=242,243,6

4. Conclusion=247,248,2

6-4. Analysis Of Extrusion Parameters For The Manufacture Of κ-Carrageenan/Starch Mixed Gels=249,250,1

1. Introduction=249,250,1

2. Materials And Methods=249,250,1

a. Materials=249,250,1

b. Extrusion=249,250,2

c. Torque And Sme=250,251,1

d. Young's Modulus=250,251,2

e. Fracture Characteristics=251,252,1

f. Response Surface Methodology=252,253,1

3. Results And Discussion=252,253,5

6-5. Physical Properties Of Extruded κ-Carrageenan/Starch Mixed Gels=257,258,1

1. Introduction=257,258,1

2. Materials And Methods=257,258,1

a. Extrusion=257,258,1

b. Gelling Time=258,259,1

c. Fracture Characteristics=258,259,1

d. Young's Modulus=258,259,3

e. Dynamic Modulus=260,261,1

3. Results And Discussion=260,261,1

a. Gelation=260,261,2

b. Fracture Characteristics=261,262,2

c. Young's Modulus=263,264,1

d. Dynamic Modulus=263,264,4

Chapter 4. Research Accomplishments And Contribution To The Related Area=267,268,1

1. Research Accomplishments=267,268,2

2. Contribution To The Related Areas=269,270,2

Chapter 5. Application Plans Of Research Results=271,272,2

Chapter 6. International Technology Information=273,274,2

[Chapter 7. References etc.]=275,276,58